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鲤疱疹病毒II型微载体培养技术与灭活疫苗浸泡免疫效果研究

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
第一章 文献综述第12-25页
    1 鲤疱疹病毒II型研究进展第12-18页
        1.1 鲫养殖现状第12页
        1.2 鲫造血器官坏死症的临床症状及其流行病学研究第12-14页
            1.2.1 鲫造血器官坏死症的临床症状第12-13页
            1.2.2 鲫造血器官坏死症的流行病学研究第13-14页
                1.2.2.1 流行区域第13页
                1.2.2.2 宿主范围第13页
                1.2.2.3 传播方式第13-14页
                1.2.2.4 流行季节第14页
        1.3 鲤疱疹病毒II型的理化和生物学特性第14页
        1.4 鲤疱疹病毒II型的诊断技术第14-17页
            1.4.1 电镜诊断技术第15页
            1.4.2 细胞培养分离法第15-16页
            1.4.3 分子生物学诊断技术第16-17页
        1.5 鲫造血器官坏死症的防治措施第17-18页
            1.5.1 药物防治第17页
            1.5.2 免疫预防第17页
            1.5.3 生态防控第17-18页
    2 微载体培养技术研究进展第18-20页
        2.1 微载体培养的发明与发展第18页
        2.2 微载体的分类与特点第18-20页
        2.3 微载体培养的问题与展望第20页
    3 渔用疫苗的研究第20-24页
        3.1 渔用疫苗的发展第20-21页
        3.2 疫苗的分类第21页
        3.3 疫苗的免疫途径第21-24页
            3.3.1 注射免疫第21-23页
            3.3.2 浸泡免疫第23页
            3.3.3 口服免疫第23-24页
    4 本论文研究的目的及意义第24-25页
第二章 鲫脑组织细胞与鲤疱疹病毒II型微载体规模化培养工艺研究第25-39页
    1 材料与方法第25-29页
        1.1 实验材料第25-26页
            1.1.1 细胞与病毒第25页
            1.1.2 实验试剂第25-26页
            1.1.3 实验仪器与设备第26页
        1.2 试验方法第26-29页
            1.2.1 种子细胞与病毒培养第26-27页
            1.2.2 Cephodex微载体预处理第27页
            1.2.3 微载体培养GiCB细胞第27页
            1.2.4 最适间歇搅拌条件的确定第27-28页
            1.2.5 血清浓度对CIK细胞贴壁的影响第28页
            1.2.6 最适微载体用量的确定第28页
            1.2.7 最适细胞接种浓度的确定第28页
            1.2.8 最适搅拌速度的确定第28页
            1.2.9 细胞形态观察与计数第28-29页
            1.2.10 病毒感染及电镜观察第29页
            1.2.11 病毒增殖曲线的测定第29页
            1.2.12 实验数据的统计与分析第29页
    2 结果与分析第29-37页
        2.1 GiCB细胞静置培养的形态及病变效应第29-30页
        2.2 最适间歇搅拌条件的确定第30页
        2.3 血清的浓度对GiCB细胞贴壁的影响第30-32页
        2.4 微载体浓度对细胞生长的影响第32页
        2.5 接种密度对GiCB细胞生长的影响第32-33页
        2.6 搅拌速度对GiCB细胞生长的影响第33-34页
        2.7 GiCB细胞在Cephodex微载体上的形态观察第34页
        2.8 病毒感染与电镜观察第34-35页
        2.9 病毒滴度测定结果第35-36页
        2.10 病毒增殖曲线测定第36-37页
    3 讨论第37-39页
第三章 CYHV-2 微载体细胞培养灭活疫苗浸泡免疫异育银鲫效果研究第39-54页
    1 材料与方法第39-46页
        1.1 实验材料第39-41页
            1.1.1 试验鱼及饲养条件第39页
            1.1.2 病毒及细胞系第39页
            1.1.3 实验试剂第39-40页
            1.1.4 实验仪器与设备第40-41页
            1.1.5 引物设计第41页
        1.2 实验方法第41-45页
            1.2.1 微载体细胞培养灭活疫苗的制备第41-42页
            1.2.2 疫苗的无菌检验与安全性检测第42页
            1.2.3 浸泡免疫第42-43页
            1.2.4 Real-time PCR检测免疫相关基因表达量第43-45页
            1.2.5 攻毒感染实验第45页
                1.2.5.1 免疫4周后攻毒感染实验第45页
                1.2.5.2 免疫8周后攻毒感染实验第45页
            1.2.6 实验鱼体病毒检测第45页
            1.2.7 实验鱼体病毒载量测定第45页
        1.3 实验数据的统计与分析第45-46页
    2 结果与分析第46-52页
        2.1 疫苗的无菌检验与安全性检验第46-47页
        2.2 C3、IL-11 和IgM基因的表达量变化第47-49页
        2.3 免疫保护效果第49-50页
            2.3.1 免疫4周后攻毒感染实验第49页
            2.3.2 免疫8周后攻毒感染实验第49-50页
        2.4 PCR病毒检测结果第50-51页
        2.5 免疫鱼病毒载量测定第51-52页
    3 讨论第52-54页
结论第54-55页
参考文献第55-65页
附录一第65-66页
附录二第66-67页
致谢第67-68页
主要试剂配制第68页

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