摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-8页 |
第1章 文献综述 | 第9-17页 |
1.1 转录因子概述 | 第9页 |
1.2 转录因子的基本结构 | 第9-10页 |
1.3 转录因子的分类 | 第10页 |
1.4 通用转录因子概述 | 第10页 |
1.5 TFⅡD与TAFs及其功能 | 第10-13页 |
1.5.1 TFⅡD及其功能 | 第10-11页 |
1.5.2 TAFs及其功能 | 第11-13页 |
1.6 蜡梅的研究进展 | 第13-17页 |
1.6.1 蜡梅资源分布 | 第13页 |
1.6.2 蜡梅的品种分类 | 第13-14页 |
1.6.3 蜡梅的繁殖栽培 | 第14页 |
1.6.4 蜡梅的化学成分研究 | 第14-15页 |
1.6.5 蜡梅的分子生物学研究 | 第15-17页 |
第2章 引言 | 第17-19页 |
2.1 研究意义和背景 | 第17-18页 |
2.2 技术路线 | 第18-19页 |
第3章 蜡梅CpTAF9基因序列特征分析和荧光定量表达分析 | 第19-29页 |
3.1 实验材料 | 第19页 |
3.1.1 蜡梅花及蜡梅花cDNA文库 | 第19页 |
3.1.2 主要试剂 | 第19页 |
3.1.3 主要仪器与分析软件 | 第19页 |
3.2 实验方法 | 第19-23页 |
3.2.1 蜡梅组织的采集 | 第19-20页 |
3.2.2 蜡梅的不同胁迫处理 | 第20页 |
3.2.3 蜡梅总RNA的提取 | 第20-21页 |
3.2.4 合成蜡梅cDNA第一链 | 第21页 |
3.2.5 CpTAF9基因表达的实时荧光定量分析 | 第21-23页 |
3.3 结果与分析 | 第23-28页 |
3.3.1 CpTAF9基因的序列特征 | 第23页 |
3.3.2 CpTAF9蛋白的多序列比对和聚类分析 | 第23-24页 |
3.3.3 总RNA的提取 | 第24-25页 |
3.3.4 CpTAF9基因的表达分析 | 第25-28页 |
3.4 讨论 | 第28-29页 |
第4章 蜡梅印CpTAF9基因表达载体的构建与转基因拟南芥的获得与分析 | 第29-51页 |
4.1 实验材料 | 第29-30页 |
4.1.1 植物材料 | 第29页 |
4.1.2 菌株与载体 | 第29页 |
4.1.3 主要仪器及试剂 | 第29页 |
4.1.4 自配溶液 | 第29-30页 |
4.1.5 常用培养基 | 第30页 |
4.2 实验方法 | 第30-39页 |
4.2.1 植物表达载体的构建 | 第30-36页 |
4.2.2 转化拟南芥 | 第36-37页 |
4.2.3 转基因拟南芥的检测 | 第37-38页 |
4.2.4 转基因拟南芥的功能分析 | 第38-39页 |
4.3 结果与分析 | 第39-48页 |
4.3.1 植物表达载体的构建 | 第39-40页 |
4.3.2 转基因拟南芥的筛选 | 第40-41页 |
4.3.3 转基因拟南芥的检测 | 第41-42页 |
4.3.4 转CpTAF9基因对拟南芥抗逆性的影响 | 第42-48页 |
4.4 讨论 | 第48-51页 |
第5章 蜡梅印TAF10基因转化拟南芥及其功能分析 | 第51-61页 |
5.1 实验材料 | 第51页 |
5.1.1 植物材料 | 第51页 |
5.1.2 菌株与载体 | 第51页 |
5.1.3 主要仪器及生化试剂 | 第51页 |
5.1.4 自配溶液 | 第51页 |
5.1.5 常用培养基 | 第51页 |
5.2 实验方法 | 第51-52页 |
5.2.1 农杆菌转化子的检测 | 第51页 |
5.2.2 转化拟南芥 | 第51页 |
5.2.3 转基因拟南芥检测 | 第51-52页 |
5.2.4 转基因拟南芥的功能分析 | 第52页 |
5.3 结果与分析 | 第52-58页 |
5.3.1 农杆菌转化子的检测 | 第52-53页 |
5.3.2 转基因植株的检测 | 第53-55页 |
5.3.3 转CpTAF10基因对拟南芥抗逆性的影响 | 第55-58页 |
5.4 讨论 | 第58-61页 |
第6章 总结 | 第61-63页 |
6.1 CpTAF9基因与其编码蛋白的生物信息学分析 | 第61页 |
6.2 实时荧光定量分析CpTAF9基因转录水平变化 | 第61页 |
6.3 转CpTAF9基因和CpTAF10基因对拟南芥抗逆性的影响 | 第61页 |
6.4 下一步计划 | 第61-63页 |
参考文献 | 第63-71页 |
致谢 | 第71-73页 |
在校期间发表的论文及参加的项目 | 第73页 |