| 摘要 | 第2-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 引言 | 第13-15页 |
| 材料与方法 | 第15-27页 |
| 1 材料 | 第15-17页 |
| 1.1 实验动物 | 第15页 |
| 1.2 实验药品 | 第15-16页 |
| 1.3 实验试剂配制 | 第16页 |
| 1.4 主要实验仪器 | 第16-17页 |
| 2 方法 | 第17-27页 |
| 2.1 术前准备及动物分组 | 第17-18页 |
| 2.2 MCAO/R模型的制备、评价及干预 | 第18页 |
| 2.3.干预措施 | 第18-20页 |
| 2.4 检测指标 | 第20-26页 |
| 2.4.1 神经功能缺损评价 | 第20-21页 |
| 2.4.2 脑组织含水量 | 第21-22页 |
| 2.4.3 TTC染色 | 第22页 |
| 2.4.4 制备石蜡切片 | 第22页 |
| 2.4.5 HE染色 | 第22页 |
| 2.4.6 尼氏染色 | 第22页 |
| 2.4.7 透射电镜观察 | 第22-23页 |
| 2.4.8 细胞凋亡检测（TUNEL） | 第23页 |
| 2.4.9 早期细胞凋亡检测（FCM） | 第23-24页 |
| 2.4.10 免疫组化 | 第24页 |
| 2.4.11 Western Blot | 第24-26页 |
| 2.5 统计学分析 | 第26-27页 |
| 结果 | 第27-47页 |
| 3.1 NRG1β 对大鼠神经行为功能的影响 | 第27-28页 |
| 3.2 NRG1β 对大鼠脑组织含水量的影响 | 第28页 |
| 3.3 NRG1β 对大鼠脑梗死体积的影响 | 第28-29页 |
| 3.4 NRG1β 对大鼠顶叶皮层神经元组织病理的影响 | 第29-32页 |
| 3.5 NRG1β 对大鼠顶叶皮层神经元一般结构的影响 | 第32-33页 |
| 3.6 NRG1β 对大鼠顶叶皮层神经元超微结构的影响 | 第33-35页 |
| 3.7 NRG1β 对大鼠顶叶皮层神经元细胞凋亡的影响 | 第35-38页 |
| 3.7.1 凋亡细胞指数的变化 | 第35-37页 |
| 3.7.2 早期细胞凋亡指数的变化 | 第37-38页 |
| 3.8 NRG1β 对大鼠Calpain1、Cdk5、p35/p25、p-Tau定位表达的影响 | 第38-42页 |
| 3.8.1 Calpain1定位表达水平的变化 | 第38页 |
| 3.8.2 Cdk5定位表达水平的变化 | 第38页 |
| 3.8.3 p35/p25定位表达水平的变化 | 第38-42页 |
| 3.8.4 p-Tau定位表达水平的变化 | 第42页 |
| 3.9 NRG1β 对大鼠Calpain1、Cdk5、p35/p25、p-Tau定量表达的影响 | 第42-47页 |
| 3.9.1 Calpain1定量表达水平的变化 | 第42页 |
| 3.9.2 Cdk5定量表达水平的变化 | 第42页 |
| 3.9.3 p35/p25定量表达水平的变化 | 第42-45页 |
| 3.9.4 p-Tau定量表达水平的变化 | 第45-47页 |
| 讨论 | 第47-52页 |
| 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
| 综述 | 第57-85页 |
| 综述参考文献 | 第77-85页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第85-86页 |
| 缩略词表（附录 1） | 第86-88页 |
| 中英对照表（附录 2） | 第88-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
