| 摘要 | 第3-4页 |
| abstract | 第4页 |
| 缩略语表 | 第10-11页 |
| 1 绪论 | 第11-17页 |
| 1.1 引言 | 第11页 |
| 1.2 研究背景和意义 | 第11-12页 |
| 1.3 国内外研究进展 | 第12-15页 |
| 1.3.1 连作对土壤微生物活动的影响 | 第12页 |
| 1.3.2 作物病害生物防治 | 第12-13页 |
| 1.3.3 高通量测序技术的出现 | 第13页 |
| 1.3.4 固氮微生物资源的收集 | 第13页 |
| 1.3.5 固氮微生物nifH基因和群落结构研究 | 第13-14页 |
| 1.3.6 固氮菌促进植物生长的生物学特性 | 第14-15页 |
| 1.3.7 PCR-DGGE技术 | 第15页 |
| 1.4 研究内容 | 第15-16页 |
| 1.5 技术路线 | 第16-17页 |
| 2 马铃薯根际土壤细菌群落结构分析 | 第17-23页 |
| 2.1 前言 | 第17页 |
| 2.2 材料与方法 | 第17-19页 |
| 2.2.1 样品来源 | 第17页 |
| 2.2.2 测序技术的步骤 | 第17-18页 |
| 2.2.3 根际土壤总DNA提取 | 第18页 |
| 2.2.4 16S rDNA基因扩增 | 第18页 |
| 2.2.5 数据计算方法 | 第18-19页 |
| 2.3 结果与分析 | 第19-22页 |
| 2.3.1 宏基因组DNA提取 | 第19页 |
| 2.3.2 马铃薯根际土壤中微生物多样性分析 | 第19-22页 |
| 2.4 讨论 | 第22-23页 |
| 3 马铃薯固氮菌分离筛选、初步鉴定及非培养法研究固氮细菌的群落结构 | 第23-36页 |
| 3.1 前言 | 第23页 |
| 3.2 材料与方法 | 第23-27页 |
| 3.2.1 样品来源 | 第23页 |
| 3.2.2 马铃薯固氮细菌分离纯化 | 第23-24页 |
| 3.2.3 分离所用培养基 | 第24-25页 |
| 3.2.4 nifH基因扩增与测序 | 第25页 |
| 3.2.5 马铃薯生固氮菌16S rDNA测序 | 第25-26页 |
| 3.2.6 PCR-DGGE法研究固氮细菌nifH的群落结构 | 第26-27页 |
| 3.3 结果与分析 | 第27-35页 |
| 3.3.1 马铃薯根际土壤及根内固氮细菌的分离 | 第27-29页 |
| 3.3.2 马铃薯固氮菌的16S rDNA初步鉴定 | 第29-32页 |
| 3.3.3 非培养法研究固氮细菌的群落结构结果 | 第32-35页 |
| 3.4 讨论 | 第35-36页 |
| 4 马铃薯固氮菌促生特性研究 | 第36-56页 |
| 4.1 前言 | 第36页 |
| 4.2 材料与方法 | 第36-41页 |
| 4.2.1 供试菌株 | 第36页 |
| 4.2.2 培养基及试剂 | 第36-37页 |
| 4.2.3 固氮酶活性测定 | 第37-38页 |
| 4.2.4 ACC脱氨酶活性测定 | 第38-39页 |
| 4.2.5 溶磷性能测定 | 第39页 |
| 4.2.6 拮抗性能测定 | 第39-40页 |
| 4.2.7 促生性能测定 | 第40页 |
| 4.2.8 17株多功能固氮菌对马铃薯的促生效果研究 | 第40-41页 |
| 4.2.9 数据分析 | 第41页 |
| 4.3 结果与分析 | 第41-54页 |
| 4.3.1 马铃薯固氮菌固氮酶活性测定 | 第41-42页 |
| 4.3.2 ACC脱氨酶活性测定 | 第42-43页 |
| 4.3.3 固氮菌的溶磷能力检测 | 第43-47页 |
| 4.3.4 马铃薯固氮菌拮抗性能测定 | 第47-50页 |
| 4.3.5 马铃薯固氮菌产IAA能力研究 | 第50-51页 |
| 4.3.6 多功能固氮菌对马铃薯的促生效果研究 | 第51-54页 |
| 4.4 讨论 | 第54-56页 |
| 5 多功能固氮菌的生理生化测定 | 第56-66页 |
| 5.1 前言 | 第56页 |
| 5.2 材料与方法 | 第56页 |
| 5.2.1 供试菌株 | 第56页 |
| 5.2.2 生理生化测定 | 第56页 |
| 5.2.3 菌株Biolog特性鉴定 | 第56页 |
| 5.3 结果与分析 | 第56-65页 |
| 5.4 讨论 | 第65-66页 |
| 6 结论 | 第66-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-76页 |
| 附录 | 第76-79页 |
| 作者简介 | 第79页 |
