| 中文摘要 | 第1-14页 |
| 英文摘要 | 第14-20页 |
| 第一部分 新生大鼠脊髓运动神经元细胞的纯化培养与鉴定 | 第20-32页 |
| （一）前言 | 第20-21页 |
| （二）材料与方法 | 第21-24页 |
| 1.实验材料 | 第21-22页 |
| ·实验动物 | 第21页 |
| ·主要试剂 | 第21-22页 |
| ·主要仪器 | 第22页 |
| 2.实验方法 | 第22-24页 |
| ·新生大鼠脊髓运动神经元细胞体外培养 | 第22-23页 |
| ·新生大鼠脊髓运动神经元细胞分类与鉴定 | 第23页 |
| ·新生大鼠脊髓运动神经元细胞计数与存活率测定 | 第23-24页 |
| ·统计学分析 | 第24页 |
| （三）结果 | 第24-26页 |
| 1.新生大鼠脊髓运动神经元生长状况与形态学变化 | 第24页 |
| 2.新生大鼠脊髓运动神经元免疫学分类鉴定结果 | 第24-26页 |
| 3.新生大鼠脊髓运动神经元计数与存活率测定结果 | 第26页 |
| （四）讨论 | 第26-29页 |
| （五）结论 | 第29-30页 |
| （六）参考文献 | 第30-32页 |
| 第二部分 他克莫司对脊髓运动神经元保护作用的实验研究 | 第32-55页 |
| （ 一 ） 前言 | 第32页 |
| （ 二 ） 材料与方法 | 第32-39页 |
| 1. 实验材料 | 第32-34页 |
| ·实验对象 | 第32-33页 |
| ·主要试剂 | 第33页 |
| ·主要仪器 | 第33-34页 |
| 2. 实验方法 | 第34-39页 |
| ·他克莫司对脊髓运动神经元细胞作用浓度筛选 | 第34页 |
| ·脊髓运动神经元缺血缺氧模型制备及分组 | 第34-35页 |
| ·免疫荧光染色法观察脊髓运动神经元生长情况 | 第35页 |
| ·四甲基偶氮唑盐比色法（MTT）检测各组细胞活力 | 第35页 |
| ·RT-PCR法检测各组运动神经元中G AP -43 m RN A含量 | 第35-37页 |
| ·Western -blot检测运动神经元p-ERK蛋白的表达 | 第37-38页 |
| ·统计学分析 | 第38-39页 |
| （三）结果 | 第39-45页 |
| 1.不同浓度他克莫司对脊髓运动神经元保护作用对比 | 第39-41页 |
| 2.各组脊髓运动神经元生长状况对比及计数分析 | 第41-42页 |
| 3.各组脊髓运动神经元活力的改变结果对比 | 第42-43页 |
| 4.脊髓运动神经元中G AP-43和p-ERK蛋白表达分析 | 第43-45页 |
| （四）讨论 | 第45-49页 |
| （五）结论 | 第49-50页 |
| （六）参考文献 | 第50-55页 |
| 第三部分 他克莫司治疗大鼠急性脊髓损伤的实验研究 | 第55-73页 |
| （ 一 ） 前言 | 第55页 |
| （ 二 ） 材料与方法 | 第55-59页 |
| 1. 实验材料 | 第55-56页 |
| ·实验动物 | 第55-56页 |
| ·主要试剂 | 第56页 |
| ·主要仪器 | 第56页 |
| 2. 实验方法 | 第56-59页 |
| ·动物模型的建立与分组 | 第56-57页 |
| ·脊髓损伤区样本处理与制备 | 第57页 |
| ·脊髓组织病理学染色与观察 | 第57页 |
| ·脊髓损伤后生化学指标检测 | 第57-58页 |
| ·脊髓损伤后运动功能恢复情况评分 | 第58页 |
| ·统计学分析 | 第58-59页 |
| （三）结果 | 第59-64页 |
| 1.各组脊髓组织病理学改变结果 | 第59页 |
| 2.各组脊髓损伤后生化学指标检测结果 | 第59-62页 |
| 3.各组脊髓损伤后运动功能恢复情况 | 第62-64页 |
| （四）讨论 | 第64-67页 |
| （五）结论 | 第67-68页 |
| （六）参考文献 | 第68-73页 |
| 综述 | 第73-88页 |
| 参考文献 | 第80-88页 |
| 附录 | 第88-90页 |
| 攻读学位期间发表文章情况 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
