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Cdk2抑制剂保护人诱导性多潜能干细胞来源的神经元对抗Aβ毒性

缩略词表第1-9页
中文摘要第9-11页
Abstract第11-13页
1. 文献综述第13-21页
   ·诱导性多潜能干细胞(iPSCs)第13-15页
     ·iPSCs的定义第13页
     ·iPSCs的产生方法第13-14页
     ·iPSCs的应用第14-15页
   ·阿尔茨海默病(AD)第15-19页
     ·AD的简介第15页
     ·AD的发病机理第15-16页
     ·AD的动物疾病模型第16-17页
     ·AD的药物治疗第17-19页
   ·应用iPSCs建立AD体外疾病模型第19-21页
     ·研究现状第19-20页
     ·小结与展望第20-21页
2. 前言第21-22页
3. 材料与方法第22-41页
   ·实验材料第22-23页
     ·主要实验仪器第22-23页
     ·主要实验试剂第23页
   ·iCell Neurons的复苏与培养第23页
   ·hiPS-C4细胞与H9 ES细胞的复苏、培养、传代与冻存第23-25页
     ·细胞复苏与培养第23-24页
     ·细胞传代第24-25页
     ·细胞冻存第25页
   ·前脑神经元的分化第25-27页
   ·Aβ1-42低聚体的制备第27页
   ·Ab1-42毒性实验和小分子化合物筛选第27-28页
   ·细胞免疫荧光染色及定量第28-31页
     ·普通细胞免疫荧光第28-30页
     ·BrdU或EdU染色第30页
     ·TUNEL染色第30页
     ·定量分析第30-31页
   ·实时定量PCR第31-33页
     ·RNA提取第31页
     ·cDNA合成第31-32页
     ·Real-time PCR第32-33页
     ·结果分析第33页
   ·聚丙烯酰胺凝胶电泳和Western Blot检测第33-36页
     ·蛋白抽提第33页
     ·蛋白浓度测定第33-34页
     ·蛋白变性第34页
     ·电泳第34页
     ·转膜第34-35页
     ·封闭第35页
     ·抗体结合及结果检测第35-36页
   ·sh RNA构建、慢病毒包装及细胞感染第36-38页
     ·sh RNA构建及质粒扩增第36-37页
     ·慢病毒包装第37-38页
     ·慢病毒滴度测定第38页
     ·细胞感染第38页
   ·电生理第38-39页
   ·神经突发生的检测第39-40页
   ·流式细胞术分析第40页
   ·数据统计分析第40-41页
4. 结果第41-75页
   ·用iCell Neurons进行药物筛选及确定Cdk2为药物靶点第41-61页
     ·iCell Neurons的培养及鉴定第42-44页
     ·检测Aβ1-42对iCell Neurons的毒性作用第44-50页
     ·应用Aβ1-42细胞毒性模型进行药物筛选第50-54页
     ·Cdk2抑制剂保护作用的机制研究第54-61页
   ·在hiPS-C4细胞来源的神经元中验证Cdk2抑制剂的保护作用及机制第61-71页
     ·前脑神经元的分化及鉴定第62-66页
     ·Aβ1-42的毒性作用第66-67页
     ·诱导hiPS-C4细胞来源的神经元重新进入细胞周期第67-69页
     ·Cdk2抑制剂的保护作用第69-71页
   ·在H9 ES细胞来源的神经元中验证Cdk2抑制剂的保护作用第71-75页
     ·前脑神经细胞的分化与鉴定第72-73页
     ·Aβ1-42对H9 ES细胞来源的神经元的毒性作用第73-74页
     ·GW8510对H9 ES细胞来源的神经元的保护作用第74-75页
5. 讨论第75-83页
   ·应用iPSCs模拟AD及药物筛选的优势第75-76页
   ·应用iPSCs进行药物筛选的必要条件第76-77页
   ·应用iPSCs进行疾病模拟和药物筛选的注意事项第77页
   ·AD脑内神经元丢失的类型第77-78页
   ·前脑神经元分化方法的选择第78-79页
   ·Aβ神经毒性作用的潜在机制第79-80页
   ·神经元重新进入细胞周期的机制第80-81页
   ·Cdk抑制剂保护神经元的作用机制第81页
   ·多通路干预联合治疗AD第81-82页
   ·研究展望第82-83页
6. 结论第83-84页
7. 致谢第84-85页
8. 参考文献第85-106页
9. 个人简历第106-107页

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