| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-8页 |
| 第一章 藻胆蛋白的生物合成与组装 | 第8-22页 |
| ·序言 | 第8页 |
| ·藻胆体简介 | 第8-10页 |
| ·藻胆蛋白简介 | 第10页 |
| ·连接多肽简介 | 第10-11页 |
| ·藻胆蛋白的组装 | 第11-13页 |
| ·单体的组装 | 第11-12页 |
| ·三聚体(AB)_3的组装 | 第12-13页 |
| ·更高级水平的组装 | 第13页 |
| ·藻胆蛋白的生物合成 | 第13-16页 |
| ·藻胆色素的生物合成 | 第13-14页 |
| ·藻胆蛋白的生物合成 | 第14-16页 |
| ·SYNECHOCYSTIS SP.PCC6803和THERMOSYNECHOCOCCUS ELONGATUS BP-1 | 第16-18页 |
| ·课题研究背景 | 第18-20页 |
| ·别藻蓝蛋白简介 | 第18-19页 |
| ·别藻蓝蛋白研究现状 | 第19-20页 |
| ·本课题的研究意义及展望 | 第20-22页 |
| 第二章 高热稳定性别藻蓝蛋白α亚基在大肠杆菌中的生物合成 | 第22-42页 |
| ·引言 | 第22-23页 |
| ·方法目的 | 第22-23页 |
| ·材料与仪器 | 第23-25页 |
| ·材料 | 第23页 |
| ·主要试剂 | 第23-24页 |
| ·培养基和常用溶液配方 | 第24页 |
| ·主要仪器 | 第24-25页 |
| ·实验方法 | 第25-34页 |
| ·PCR扩增与重组质粒构建 | 第25-30页 |
| ·质粒提取和普通DNA纯化步骤 | 第30-31页 |
| ·凝胶回收步骤 | 第31-32页 |
| ·两种别藻蓝蛋白A亚基在大肠杆菌体内的诱导表达 | 第32页 |
| ·表达产物的纯化 | 第32页 |
| ·SDS-PAGE电泳及ZNS04显色 | 第32-33页 |
| ·光谱分析 | 第33页 |
| ·稳定性实验 | 第33-34页 |
| ·结果与分析 | 第34-41页 |
| ·质粒构建与蛋自诱导表达 | 第34-35页 |
| ·光谱特性 | 第35-36页 |
| ·光漂白稳定性分析 | 第36-37页 |
| ·PH稳定性分析 | 第37-38页 |
| ·热稳定性分析 | 第38-39页 |
| ·贮藏稳定性分析 | 第39-41页 |
| ·结论 | 第41-42页 |
| 第三章 两种别藻蓝蛋白β亚基在大肠杆菌体内的生物合成 | 第42-54页 |
| ·引言 | 第42-43页 |
| ·方法目的 | 第42-43页 |
| ·材料与仪器 | 第43-45页 |
| ·材料 | 第43页 |
| ·主要试剂 | 第43页 |
| ·培养基和常用溶液配制 | 第43-44页 |
| ·主要仪器 | 第44-45页 |
| ·实验方法 | 第45-51页 |
| ·PCR扩增与重组质粒构建 | 第45-50页 |
| ·普通DNA产物纯化和凝胶回收步骤 | 第50页 |
| ·两种别藻蓝蛋白B亚基在大肠杆菌体内的诱导表达 | 第50-51页 |
| ·SDS-PAGE电泳及ZNSO4显色 | 第51页 |
| ·结果与分析 | 第51-53页 |
| ·质粒构建与蛋白诱导表达 | 第51-53页 |
| ·结论 | 第53-54页 |
| 第四章 高热稳定性别藻蓝蛋白在大肠杆菌中的生物合成 | 第54-64页 |
| ·引言 | 第54-55页 |
| ·材料与仪器 | 第55-57页 |
| ·材料与试剂 | 第55页 |
| ·培养基和常用溶液配制 | 第55-56页 |
| ·主要仪器 | 第56-57页 |
| ·实验方法 | 第57-61页 |
| ·质粒提取 | 第57-58页 |
| ·化转感受态大肠杆菌BL21(DE3) | 第58-59页 |
| ·阳性克隆筛选 | 第59-60页 |
| ·重组别藻蓝蛋白诱导表达 | 第60页 |
| ·表达产物的纯化 | 第60页 |
| ·SDS-PAGE电泳及ZNSO4显色 | 第60-61页 |
| ·光谱分析 | 第61页 |
| ·结果与分析 | 第61-63页 |
| ·蛋白诱导表达 | 第61-63页 |
| ·讨论 | 第63-64页 |
| 结论 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-74页 |
| 致谢 | 第74-76页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第76-78页 |
