摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-10页 |
第一章 引言 | 第10-22页 |
1. 芒草资源概述 | 第10-12页 |
·生物质能发展的意义 | 第10页 |
·能源植物芒草 | 第10-11页 |
·芒草资源的开发利用 | 第11-12页 |
2 木质纤维素的组成结构及原料预处理 | 第12-16页 |
·纤维素 | 第12-13页 |
·半纤维素 | 第13-14页 |
·木质素 | 第14-15页 |
·芒草秸秆的预处理方法 | 第15-16页 |
3 纤维素酶系 | 第16-17页 |
4 降解木质纤维素的复合菌系 | 第17-20页 |
·降解木质纤维素的复合菌系国外研究现状 | 第18-20页 |
·降解木质纤维素的复合菌系国内研究现状 | 第20页 |
5 本论文的研究目的、意义及内容 | 第20-22页 |
第二章 高效芒草木质纤维素分解菌复合系的构建 | 第22-27页 |
1 材料 | 第22-23页 |
·样品来源 | 第22-23页 |
·培养基 | 第23页 |
·主要仪器 | 第23页 |
·主要试剂 | 第23页 |
2 实验方法 | 第23-24页 |
·实验样品的采集 | 第23-24页 |
·实验样品菌悬液的制备 | 第24页 |
·复合菌系的筛选与构建 | 第24页 |
3 结果与分析 | 第24-26页 |
·复合菌的初筛 | 第24-25页 |
·复合菌系保存稳定性检测 | 第25-26页 |
4 本章小结 | 第26-27页 |
第三章 高效芒草木质纤维素分解菌复合系降解特性研究 | 第27-45页 |
1 材料 | 第27-29页 |
·菌种 | 第27页 |
·主要仪器 | 第27页 |
·培养基 | 第27页 |
·主要试剂 | 第27-29页 |
2 实验方法 | 第29-31页 |
·复合菌种子液的制备 | 第29页 |
·影响芒草纤维素日均降解率的单因素实验 | 第29页 |
·响应曲面法优化芒草纤维降解条件 | 第29-30页 |
·发酵前后芒草纤维素、半纤维素和木质素含量的测定 | 第30-31页 |
·复合菌初酶液制备 | 第31页 |
·复合菌滤纸酶活(FPA)的测定 | 第31页 |
·复合菌发酵过程中总糖含量及pH值的测定 | 第31页 |
·复合菌对棉花纤维素的降解能力检测 | 第31页 |
3 结果与分析 | 第31-43页 |
·芒草纤维素日均降解率的单因素实验 | 第31-33页 |
·响应曲面法优化芒草纤维降解条件 | 第33-34页 |
·Box-Behnken中心组合试验建立多元二次回归方程 | 第34-37页 |
·响应曲面的拟合以及最佳操作点的确定 | 第37-40页 |
·实验验证预测理论值 | 第40页 |
·复合菌发酵前后芒草纤维素、半纤维素、木质素含量的测定 | 第40-42页 |
·复合菌对棉花纤维素的降解能力检测 | 第42页 |
·复合菌发酵过程中滤纸酶活的测定 | 第42-43页 |
·复合菌发酵过程中总糖含量的变化 | 第43页 |
4 本章小结 | 第43-45页 |
第四章 高效芒草木质纤维素分解菌复合系多样性分析 | 第45-56页 |
1 实验材料 | 第45-46页 |
·实验样品 | 第45页 |
·主要仪器 | 第45页 |
·培养基 | 第45页 |
·主要试剂 | 第45-46页 |
2 实验方法 | 第46-51页 |
·产纤维素酶单菌株分离纯化 | 第46页 |
·革兰氏染色 | 第46页 |
·菌株的16S rDNA序列鉴定 | 第46-51页 |
3 结果与讨论 | 第51-55页 |
·产纤维素酶单菌株的分离纯化 | 第51-52页 |
·革兰氏染色 | 第52页 |
·菌株的16S rDNA序列鉴定结果 | 第52-55页 |
4 本章小结 | 第55-56页 |
第五章 结论及下一步工作计划 | 第56-58页 |
1 主要结论 | 第56-57页 |
2 创新点 | 第57页 |
3 下一步工作计划 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-62页 |
附录 | 第62-69页 |
附录 1:滤纸酶活的测定 | 第62-65页 |
附录 2:蒽酮法测定总糖含量 | 第65-67页 |
附录 3:革兰氏染色 | 第67-68页 |
附录 4:DNA Marker条带图谱 | 第68-69页 |
致谢 | 第69-70页 |
作者简介 | 第70页 |