中文摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-18页 |
符号说明 | 第18-20页 |
第一章 引言 | 第20-25页 |
参考文献 | 第22-25页 |
第二章 骨髓间充质干细胞的体外培养、鉴定和 CXCR4 的表达 | 第25-51页 |
第一节 前言 | 第25-26页 |
第二节 实验材料 | 第26-30页 |
·实验动物 | 第26页 |
·实验成品细胞 | 第26-27页 |
·主要材料试剂 | 第27页 |
·主要仪器 | 第27-28页 |
·主要试剂的配制方法 | 第28-30页 |
第三节 实验方法 | 第30-36页 |
·大鼠 BMSCs 的获取分离及体外培养 | 第30页 |
·大鼠 RFP- BMSCs 的体外培养 | 第30-31页 |
·流式细胞检测 BMSCs/RFP-BMSCs 的表面抗体 | 第31页 |
·BMSCs/RFP-BMSCs 的成骨及成脂诱导 | 第31页 |
·细胞免疫荧光检测 BMSCs/RFP-BMSCs 的 CXCR4 的表达 | 第31-32页 |
·RT-PCR 检测 BMSCs/RFP-BMSCs 的 CXCR4 的表达 | 第32-34页 |
·Western blot 检测 BMSCs/RFP-BMSCs 的 CXCR4 的表达 | 第34-36页 |
·统计学处理 | 第36页 |
第四节 实验结果 | 第36-44页 |
·大鼠 BMSCs/RFP-BMSCs 的体外培养及传代观察 | 第36-38页 |
·大鼠 BMSCs/RPF-BMSCs 的流式细胞仪检测结果 | 第38-39页 |
·大鼠 BMSCs/RPF-BMSCs 成骨及成脂诱导结果 | 第39-40页 |
·细胞免疫荧光检测 BMSCs/RFP-BMSCs 的 CXCR4 的表达 | 第40-43页 |
·Real time PCR 检测大鼠 BMSCs/RFP-BMSCs 的 CXCR4 在 mRNA 中的表达 | 第43页 |
·Western blot 检测大鼠 BMSCs/RFP-BMSCs 的 CXCR4 蛋白的表达 | 第43-44页 |
第五节 讨论 | 第44-47页 |
第六节 结论 | 第47页 |
第七节 参考文献 | 第47-51页 |
第三章 SDF-1/CXCR4 轴介导大鼠骨髓间充质干细胞向损伤神经组织迁移的体外实验研究 | 第51-71页 |
第一节 前言 | 第51-52页 |
第二节 实验材料 | 第52-54页 |
·实验动物 | 第52页 |
·主要材料试剂 | 第52-53页 |
·主要仪器和器材 | 第53页 |
·主要试剂的配制方法 | 第53-54页 |
第三节 实验方法 | 第54-57页 |
·BMSCs 的培养 | 第54页 |
·制备大鼠坐骨神经横断模型 | 第54页 |
·Wallerian 变性神经组织提取液的制备 | 第54-55页 |
·正常大鼠坐骨神经组织提取液的制备 | 第55页 |
·BMSCs 悬液的准备 | 第55页 |
·SDF-1 对 BMSCs 的体外趋化迁移实验 | 第55-56页 |
·周围神经组织提取液对 BMSCs 的体外趋化迁移实验 | 第56-57页 |
·统计学处理 | 第57页 |
第四节 实验结果 | 第57-62页 |
·SDF-1 对 BMSCs 迁移的趋化作用 | 第57-60页 |
·神经组织提取液对 BMSCs 迁移的趋化作用 | 第60-62页 |
第五节 讨论 | 第62-67页 |
第六节 结论 | 第67页 |
第七节 参考文献 | 第67-71页 |
第四章 SDF-1/CXCR4 轴介导静脉移植 BMSCs 向损伤神经组织归巢的体内实验研究 | 第71-93页 |
第一节 前言 | 第71-72页 |
第二节 实验材料 | 第72-74页 |
·实验动物 | 第72页 |
·实验成品细胞 | 第72-73页 |
·主要材料试剂 | 第73页 |
·主要仪器 | 第73-74页 |
·主要试剂的配制方法 | 第74页 |
第三节 实验方法 | 第74-80页 |
·RT-PCR 检测大鼠坐骨神经 Wallerian 变性后 SDF-1 表达的变化 | 第74-77页 |
·SDF-1/CXCR4 引导大鼠尾静脉注射 RFP-BMSCs 向 Wallerian 变性坐骨神经的归巢现象观察 | 第77-80页 |
·统计学处理 | 第80页 |
第四节 实验结果 | 第80-87页 |
·大鼠坐骨神经 Wallerian 变性后 SDF-1 在 mRNA 中的表达 | 第80-82页 |
·RFP-BMSCs 向神经组织归巢的荧光成像情况 | 第82-84页 |
·各组大鼠的坐骨神经组织中移植细胞的存活及分布情况 | 第84-86页 |
·RFP-BMSCs 移植后在大鼠各主要脏器的分布 | 第86-87页 |
第五节 讨论 | 第87-90页 |
第六节 结论 | 第90页 |
第七节 参考文献 | 第90-93页 |
第五章 骨髓间充质干细胞的迁移对神经节段性损伤的修复作用及其转归的实验研究 | 第93-123页 |
第一节 前言 | 第93-94页 |
第二节 实验材料 | 第94-97页 |
·实验动物 | 第94页 |
·实验成品细胞 | 第94页 |
·主要材料试剂 | 第94-95页 |
·主要仪器 | 第95页 |
·主要试剂的配制方法 | 第95-97页 |
第三节 实验方法 | 第97-104页 |
·CEANA 的制备和鉴定 | 第97-98页 |
·实验用细胞的准备 | 第98页 |
·实验动物分组 | 第98页 |
·动物损伤模型制备及修复方法 | 第98-100页 |
·一般观察 | 第100页 |
·坐骨神经功能指数测定 | 第100-101页 |
·电生理检测 | 第101页 |
·小腿三头肌收缩力恢复率的测定 | 第101页 |
·小腿三头肌湿重恢复率的测定 | 第101-102页 |
·组织学观察 | 第102-103页 |
·统计学分析 | 第103-104页 |
第四节 实验结果 | 第104-116页 |
·一般情况观察 | 第104页 |
·坐骨神经指数 | 第104-105页 |
·电生理检测 | 第105-107页 |
·免疫荧光染色 | 第107-111页 |
·远端神经半薄切片及甲苯胺蓝染色结果 | 第111-114页 |
·小腿三头肌收缩力/湿重恢复率测定和组织学观察 | 第114-116页 |
第五节 讨论 | 第116-119页 |
第六节 结论 | 第119页 |
第七节 参考文献 | 第119-123页 |
第六章 大鼠隐神经和股神经肌支的双向电泳分析及蛋白质谱鉴定98 | 第123-141页 |
第一节 前言 | 第123-124页 |
第二节 实验材料 | 第124-127页 |
·实验动物 | 第124页 |
·主要材料试剂 | 第124-125页 |
·主要仪器和器材 | 第125-126页 |
·主要试剂的配制方法 | 第126-127页 |
第三节 实验方法 | 第127-131页 |
·周围感觉和运动神经的获取 | 第127-128页 |
·感觉和运动神经组织全蛋白提取及蛋白含量测定 | 第128页 |
·感觉和运动神经组织蛋白的双向电泳 | 第128-130页 |
·差异蛋白的胶内酶切与肽段的提取和鉴定 | 第130-131页 |
第四节 实验结果 | 第131-136页 |
·蛋白质含量测定结果 | 第131-132页 |
·双向电泳图像 | 第132-135页 |
·差异蛋白质谱鉴定 | 第135-136页 |
第五节 讨论 | 第136-138页 |
第六节 结论 | 第138页 |
第七节 参考文献 | 第138-141页 |
第七章 大鼠脊髓背侧神经根和腹侧神经根的双向电泳分析及蛋白质谱鉴定 | 第141-153页 |
第一节 前言 | 第141-142页 |
第二节 实验材料 | 第142页 |
·实验动物 | 第142页 |
·主要材料试剂 | 第142页 |
·主要仪器和器材 | 第142页 |
·主要试剂的配制方法 | 第142页 |
第三节 实验方法 | 第142-143页 |
·高节段周围感觉和运动神经的获取 | 第142-143页 |
·感觉和运动神经组织全蛋白提取及蛋白含量测定 | 第143页 |
·感觉和运动神经组织蛋白的双向电泳 | 第143页 |
·差异蛋白的胶内酶切与肽段的提取和鉴定 | 第143页 |
第四节 实验结果 | 第143-148页 |
·蛋白质含量测定结果 | 第143-144页 |
·双向电泳图像 | 第144-147页 |
·差异蛋白质谱鉴定 | 第147-148页 |
第五节 讨论 | 第148-150页 |
第六节 结论 | 第150页 |
第七节 参考文献 | 第150-153页 |
参考文献 | 第153-166页 |
致谢 | 第166-168页 |
附录 | 第168-196页 |
第一节 综述一 The role of stem cell in the regeneration and repair of peripheral nerve | 第168-187页 |
Reference | 第179-187页 |
第二节 综述二间充质干细胞的归巢与周围神经修复的研究进展 | 第187-196页 |
参考文献 | 第191-196页 |
个人简历 在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第196-199页 |