| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 英文缩写词 | 第9-10页 |
| 文献综述 | 第10-17页 |
| 1. 引言 | 第17-19页 |
| ·研究目的及意义 | 第17页 |
| ·本研究要解决的问题 | 第17-19页 |
| 2. 材料与方法 | 第19-26页 |
| ·试验材料 | 第19-20页 |
| ·菌种来源 | 第19页 |
| ·供试土壤 | 第19页 |
| ·主要培养基 | 第19页 |
| ·化学试剂 | 第19-20页 |
| ·主要仪器与设备 | 第20页 |
| ·试验方法 | 第20-26页 |
| ·发光酶基因luxAB标记毒死蜱降解菌株X1 | 第20-22页 |
| ·测定X1菌株的抗生素抗性 | 第20-21页 |
| ·E.coli WA803质粒pTR102的提取 | 第21页 |
| ·X1菌株感受态细胞的制备 | 第21-22页 |
| ·pTR102电转化X1菌株 | 第22页 |
| ·luxAB标记菌株的鉴定质粒检测与PCR鉴定 | 第22页 |
| ·luxAB标记菌株的遗传稳定性试验 | 第22页 |
| ·标记菌株和出发菌株生理特性比较 | 第22-23页 |
| ·标记菌株和出发菌株在水中对毒死蜱降解特性的比较 | 第23-24页 |
| ·标记菌株在不同类型土壤中的存活和对土壤中毒死蜱的降解能力 | 第24-26页 |
| ·标记菌株在不同类型土壤中的存活 | 第24-25页 |
| ·土壤中毒死蜱的残留量测定 | 第25-26页 |
| 3. 结果与分析 | 第26-36页 |
| ·毒死蜱降解菌X1菌株的抗药性 | 第26页 |
| ·质粒PTR102的浓度与纯度 | 第26-27页 |
| ·pTR102对毒死蜱降解菌X1菌株的电转化结果 | 第27-29页 |
| ·不同脉冲场强与电击时间条件下的电转化试验 | 第27-28页 |
| ·不同质粒浓度条件下的电转化试验 | 第28页 |
| ·发光酶luxAB标记菌株的发光检测 | 第28-29页 |
| ·转化子质粒检测与PCR鉴定 | 第29-30页 |
| ·转化子的遗传稳定性检测 | 第30页 |
| ·标记菌株与出发菌株生长动态的比较 | 第30-32页 |
| ·温度对X1、Lux-X1菌株生长的影响 | 第30-31页 |
| ·pH对X1、Lux-X1菌株生长的影响 | 第31-32页 |
| ·X1、Lux-X1菌株生长曲线的绘制 | 第32页 |
| ·X1、Lux-X1菌株在水中对毒死蜱降解效率的比较 | 第32-33页 |
| ·不同类型土壤中Lux-X1菌株的存活状况及对毒死蜱的降解 | 第33-36页 |
| ·Lux-X1菌株在不同类型土壤中的存活 | 第33-34页 |
| ·Lux-X1菌株在不同类型土壤中对毒死蜱的降解能力 | 第34-36页 |
| 4. 讨论 | 第36-39页 |
| ·pTR102电转化导入毒死蜱降解菌X1菌株的条件优化 | 第36页 |
| ·标记菌株的发光检测 | 第36-37页 |
| ·标记菌株与出发菌株生长动态和对毒死蜱降解能力的比较 | 第37页 |
| ·luxAB标记菌株在不同类型土壤中的存活状况和对毒死蜱的降解能力 | 第37-39页 |
| 5. 结论 | 第39-41页 |
| ·结论 | 第39-40页 |
| ·展望 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 作者简介 | 第48页 |
