中文摘要 | 第1-4页 |
ABSTRACT | 第4-8页 |
缩略词 | 第8-10页 |
引言 | 第10-12页 |
实验研究 | 第12-43页 |
1 材料 | 第12-15页 |
·实验动物 | 第12页 |
·饲养环境及饲料 | 第12页 |
·实验药品 | 第12-13页 |
·主要试剂及试剂盒 | 第13-14页 |
·主要仪器和材料 | 第14-15页 |
2 方法 | 第15-23页 |
·分组及造模方法 | 第15页 |
·给药方法 | 第15-16页 |
·标本采集与处理 | 第16页 |
·观察指标及检测方法 | 第16-22页 |
·统计学方法 | 第22-23页 |
3 实验结果分析 | 第23-42页 |
·动物一般情况的观察 | 第23页 |
·各组大鼠饮水量情况(表1、图1、图2) | 第23-25页 |
·各组大鼠摄食量变化(表2、图3、图4) | 第25-27页 |
·各组大鼠体重水平变化(表3、图5) | 第27-28页 |
·各组大鼠血糖水平的变化(表4、图6、图7) | 第28-29页 |
·对血清SOD活力的影响(表5、图8) | 第29-30页 |
·对血清GSH-Px的影响(表6、图9) | 第30-31页 |
·对血清MDA含量的影响(表7、图10) | 第31-32页 |
·对血清T-AOC水平的影响(表8、图11) | 第32-33页 |
·对主动脉醛糖还原酶AR活性的影响(表8,图12) | 第33-34页 |
·各组大鼠腹主动脉切片HE染色观察 | 第34-35页 |
·内参β-actin扩增曲线及融解曲线情况(图13、图14) | 第35-36页 |
·各组大鼠胸主动脉p22phox mRNA RT-PCR扩增曲线及熔解曲线情况(图15,图16) | 第36-37页 |
·各组大鼠胸主动脉p47phox mRNA RT-PCR扩增曲线及熔解曲线情况(图17,图18) | 第37-38页 |
·各组大鼠胸主动脉p22phox mRNA表达水平的变化(表10,图19) | 第38-39页 |
·各组大鼠胸主动脉p47phox mRNA表达水平的变化(表11,图20) | 第39-40页 |
·空腹血糖与血清T-AOC水平相关性分析 | 第40页 |
·空腹血糖与红细胞AR活性相关性分析 | 第40-42页 |
4 小结 | 第42-43页 |
讨论 | 第43-81页 |
1 祖国医学对糖尿病大血管病变的认识 | 第43-49页 |
·病因认识 | 第43-45页 |
·病机认识 | 第45-49页 |
2 现代医学对糖尿病大血管病变的认识 | 第49-57页 |
·糖尿病大血管病变的流行病学调查 | 第49-50页 |
·糖尿病大血管病变的病因和发病机制 | 第50-56页 |
·糖尿病大血管病变的病理改变 | 第56-57页 |
3 糖尿病大血管病变的治疗 | 第57-59页 |
·中医辨证论治 | 第57-58页 |
·西医治疗 | 第58-59页 |
4 本实验动物模型评价 | 第59-64页 |
·动物种属的选择 | 第59-60页 |
·动物模型制备 | 第60-63页 |
·本次实验动物模型的建立 | 第63-64页 |
5 药物的选择 | 第64-69页 |
·参芪复方研究 | 第64-67页 |
·阳性对照组药物的选择 | 第67-68页 |
·药物剂量的确定 | 第68-69页 |
6 造模同时给药的设计思路 | 第69-71页 |
7 参芪复方对早期糖尿病大血管病变氧化应激影响的机理探讨 | 第71-81页 |
·参芪复方对糖尿病大血管病变GK大鼠一般状态的影响 | 第71-72页 |
·参芪复方对糖尿病大血管病变GK大鼠血糖的影响 | 第72页 |
·参芪复方对糖尿病大血管病变GK大鼠抗氧化酶的影响 | 第72-74页 |
·参芪复方对糖尿病大血管病变GK大鼠血清丙二醛(MDA)的影响 | 第74-75页 |
·参芪复方对糖尿病大鼠大血管病变GK大鼠总抗氧化能力(T-AOC)的影响 | 第75-76页 |
·参芪复方对糖尿病大血管病变GK大鼠红细胞醛糖还原酶的影响 | 第76-78页 |
·参芪复方对糖尿病大血管病变GK大鼠NADPH氧化酶亚基的影响 | 第78-81页 |
问题与展望 | 第81-82页 |
结论 | 第82-83页 |
致谢 | 第83-84页 |
参考文献 | 第84-95页 |
附件一 附图 | 第95-96页 |
附件二 综述 | 第96-107页 |
参考文献 | 第103-107页 |
攻读博士学位期间公开发表的学术论文 | 第107-108页 |