| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 中英文对照词 | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-30页 |
| ·引言 | 第12-13页 |
| ·乙烯与果实成熟软化 | 第13-16页 |
| ·乙烯的生物合成 | 第13-14页 |
| ·乙烯生成和感受性的调节 | 第14-16页 |
| ·细胞壁与果实成熟软化 | 第16-28页 |
| ·果实成熟软化过程中细胞壁结构的变化 | 第17-18页 |
| ·果实成熟软化过程中细胞壁多糖成分变化 | 第18-20页 |
| ·果实成熟软化过程中细胞壁多糖组份分子量的变化 | 第20-21页 |
| ·果实成熟软化过程中细胞壁多糖中单糖组成的变化 | 第21-22页 |
| ·果实成熟软化过程中细胞壁水解相关酶的变化 | 第22-27页 |
| ·与果实成熟软化相关的其它因素 | 第27-28页 |
| ·本研究的主要目的和研究内容 | 第28-30页 |
| 第二章 不同溶质型桃果实成熟软化特性及细胞壁超微结构的变化 | 第30-45页 |
| ·引言 | 第30页 |
| ·材料及方法 | 第30-32页 |
| ·供试材料及处理 | 第30-31页 |
| ·果实硬度的测定 | 第31页 |
| ·果实总可溶性固形物含量的测定 | 第31-32页 |
| ·乙烯释放量的测定 | 第32页 |
| ·呼吸速率的测定 | 第32页 |
| ·电镜切片的制作与观察 | 第32页 |
| ·结果与分析 | 第32-42页 |
| ·不同溶质型桃果实成熟软化过程中果实硬度的变化 | 第32-33页 |
| ·不同溶质型桃果实成熟软化过程中总可溶性固形物含量的变化 | 第33-34页 |
| ·不同溶质型桃果实成熟软化过程中呼吸速率的变化 | 第34-36页 |
| ·不同溶质型桃果实成熟软化过程中乙烯释放量的变化 | 第36-37页 |
| ·不同溶质型桃果实成熟软化过程中细胞壁超微结构的变化 | 第37-42页 |
| ·讨论 | 第42-45页 |
| 第三章 不同溶质型桃果实成熟软化过程中细胞壁多糖降解特科的研究 | 第45-66页 |
| ·引言 | 第45-46页 |
| ·材料及方法 | 第46-49页 |
| ·供试材料及处理 | 第46页 |
| ·果实细胞壁物质(CWM)的提取 | 第46页 |
| ·果实细胞壁多糖的分步提取 | 第46页 |
| ·细胞壁多糖分子量分布的变化 | 第46-47页 |
| ·细胞壁多糖中单糖组成分析 | 第47-49页 |
| ·结果与分析 | 第49-63页 |
| ·不同溶质型桃果实成熟软化过程中细胞壁物质量的变化 | 第49页 |
| ·不同溶质型桃果实成熟软化过程中细胞壁多糖组份的变化 | 第49-52页 |
| ·不同溶质型桃果实成熟软化过程中细胞壁多糖组份分子量分布的变化 | 第52-56页 |
| ·不同溶质型桃果实成熟软化过程中细胞壁多糖组份中单糖组成的变化 | 第56-63页 |
| ·讨论 | 第63-66页 |
| 第四章 桃果实成熟软化与细胞壁降解相关糖苷酶及乙烯生物合成关系研究 | 第66-77页 |
| ·引言 | 第66-67页 |
| ·材料与方法 | 第67-70页 |
| ·供试材料与处理 | 第67页 |
| ·ACO活性的测定 | 第67页 |
| ·ACS活性的测定 | 第67-68页 |
| ·β-Gal活性的测定 | 第68页 |
| ·α-Af活性的测定 | 第68页 |
| ·桃果实总RNA提取 | 第68页 |
| ·cDNA的合成 | 第68-69页 |
| ·α-AF、β-GAL、ACO、ACS基因的RT-PCR和荧光定量PCR(real-time PCR) | 第69-70页 |
| ·结果与分析 | 第70-74页 |
| ·不同溶质型桃果实成熟软化过程中ACO活性及其基因表达的变化 | 第70-71页 |
| ·不同溶质型桃果实成熟软化过程中ACS活性及其基因表达的变化 | 第71-72页 |
| ·不同溶质型桃果实成熟软化过程中β-Gal活性及其基因表达的变化 | 第72-73页 |
| ·不同溶质型桃果实成熟软化过程中α-Af活性及其基因表达的变化 | 第73-74页 |
| ·讨论 | 第74-77页 |
| 第五章 桃果实成熟软化过程中α-L-阿拉伯呋喃糖苷酶蛋白表达研究 | 第77-86页 |
| ·引言 | 第77页 |
| ·材料及方法 | 第77-81页 |
| ·供试材料及处理 | 第77页 |
| ·主要试剂与仪器设备 | 第77-78页 |
| ·α-AF蛋白的表达 | 第78-79页 |
| ·桃果实中总蛋白的提取 | 第79页 |
| ·桃果实中α-AF蛋白表达分析 | 第79-81页 |
| ·结果与分析 | 第81-85页 |
| ·PCR扩增α-AF基因全长 | 第81页 |
| ·重组质粒(pMD 18-T-α-AF)的PCR和双酶切鉴定 | 第81-82页 |
| ·重组质粒(pMD 18-T-α-AF)的测序 | 第82页 |
| ·目的基因与表达载体连接产物鉴定 | 第82-83页 |
| ·大肠杆菌BL21重组子的鉴定 | 第83-84页 |
| ·目的蛋白的表达 | 第84页 |
| ·不同溶质型桃果实成熟软化过程中α-AF蛋白的表达 | 第84-85页 |
| ·讨论 | 第85-86页 |
| 第六章 1-MCP处理对桃果实成熟软化及对α-AF酶基因蛋白表达的调控 | 第86-96页 |
| ·引言 | 第86页 |
| ·材料及方法 | 第86-87页 |
| ·供试材料及1-MCP处理 | 第86-87页 |
| ·结果与分析 | 第87-93页 |
| ·1-MCP处理对桃果实采后贮藏过程中硬度变化的影响 | 第87页 |
| ·1-MCP处理对桃果实采后贮藏过程中总可溶性固形物变化的影响 | 第87-88页 |
| ·1-MCP处理对桃果实采后贮藏过程中呼吸速率的影响 | 第88页 |
| ·1-MCP处理对桃果实采后贮藏过程中乙烯释放量的影响 | 第88-90页 |
| ·1-MCP处理对桃果实采后贮藏过程中细胞壁结构的影响 | 第90-92页 |
| ·1-MCP处理对桃果实采后贮藏过程中a-L-阿拉伯呋喃糖苷酶活性、基因表达的影响 | 第92-93页 |
| ·1-MCP处理对桃果实采后贮藏过程中a-L-阿拉伯呋喃糖苷酶蛋白表达的影响 | 第93页 |
| ·讨论 | 第93-96页 |
| 第七章 结语 | 第96-99页 |
| ·结论 | 第96-97页 |
| ·本研究的创新点 | 第97页 |
| ·展望 | 第97-99页 |
| 参考文献 | 第99-116页 |
| 致谢 | 第116-117页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第117-118页 |
