| 英文缩写符合及其中英文对照表 | 第1-9页 |
| 中文摘要 | 第9-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第11-24页 |
| ·乙烯与果实成熟衰老 | 第11-13页 |
| ·乙烯信号转导研究进展 | 第13-22页 |
| ·拟南芥乙烯信号转导研究进展 | 第13-20页 |
| ·乙烯受体基因家族及其分类 | 第14-15页 |
| ·CTR1 | 第15-16页 |
| ·EIN2 和ETP | 第16-17页 |
| ·EIN3（EILs）和EBF | 第17-19页 |
| ·ERF（EREBP） | 第19-20页 |
| ·番茄等果实的乙烯信号转导研究进展 | 第20-22页 |
| ·本论文研究的目的与内容 | 第22-23页 |
| ·本论文研究的目的 | 第22-23页 |
| ·本论文研究的内容 | 第23页 |
| ·本论文研究的创新点 | 第23-24页 |
| 2 材料与方法 | 第24-34页 |
| ·试验材料 | 第24-26页 |
| ·植物材料与试剂 | 第24页 |
| ·主要仪器设备 | 第24页 |
| ·常用试剂配制 | 第24-25页 |
| ·PCR 引物 | 第25-26页 |
| ·实验方法 | 第26-28页 |
| ·总RNA 提取 | 第26-27页 |
| ·甜樱桃果实总RNA 提取 | 第26-27页 |
| ·花和叶片中总RNA 提取 | 第27页 |
| ·核酸质量及浓度测定 | 第27页 |
| ·反转录cDNA 第一条链的合成 | 第27-28页 |
| ·cDNA 全长序列的获得 | 第28-31页 |
| ·PacEIN2 基因的扩增条件和程序 | 第28页 |
| ·PacEILs 基因的扩增条件和程序 | 第28-29页 |
| ·PacEIL1 的5’端cDNA 序列扩增 | 第29页 |
| ·PacEIL2 的5’端cDNA 序列扩增 | 第29页 |
| ·PacEIL3 序列的克隆 | 第29页 |
| ·PacEBF1 基因的扩增条件和程序 | 第29-30页 |
| ·PacEBF1 的中间序列片段的克隆 | 第29页 |
| ·PacEBF1 的3’端cDNA 序列扩增 | 第29-30页 |
| ·PacEBF1 的5’端cDNA 序列扩增 | 第30页 |
| ·PCR 产物的克隆 | 第30-31页 |
| ·重组质粒的转化及鉴定 | 第30-31页 |
| ·PCR 产物的回收和纯化 | 第31页 |
| ·DNA 序列测定 | 第31页 |
| ·荧光定量PCR 分析不同时期和组织的表达量 | 第31-34页 |
| ·引物设计 | 第31-32页 |
| ·反转录反应（RT） | 第32页 |
| ·Real Time PCR 反应 | 第32-34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-47页 |
| ·PacEIN2 的cDNA 克隆与序列分析 | 第34-37页 |
| ·PacEIN2 保守区序列的扩增 | 第34页 |
| ·PacEIN2 的全长cDNA 克隆 | 第34-37页 |
| ·PacEIN2 的序列分析 | 第37页 |
| ·PacEILs 的 cDNA 克隆与序列分析 | 第37-40页 |
| ·PacEILs 的cDNA 克隆 | 第37-38页 |
| ·PacEILs 的序列分析 | 第38-40页 |
| ·PacEBF1 的cDNA 克隆与序列分析 | 第40-44页 |
| ·PacEBF1 的cDNA 克隆 | 第40页 |
| ·PacEBF1 的序列分析 | 第40-43页 |
| ·PacEBF1 与其它EBF 基因的聚类分析 | 第43-44页 |
| ·四个乙烯信号转导基因在果实和叶片中的表达分析 | 第44-47页 |
| ·四个基因在红灯和早大果两个品种不同组织中的表达 | 第44-45页 |
| ·四个基因在红灯和早大果两个品种不同果实成熟期中的表达 | 第45-47页 |
| 4 讨论 | 第47-50页 |
| 5 结论与展望 | 第50-52页 |
| ·主要结论 | 第50页 |
| ·后续研究工作的展望 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 攻读学位期间发表论文 | 第62-63页 |
| 硕士学位论文内容简介及自评 | 第63页 |