| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-13页 |
| 引言 | 第13-15页 |
| 1 文献综述 | 第15-43页 |
| ·国内外海水灌溉技术的发展现状 | 第15-18页 |
| ·国外海水灌溉技术的发展 | 第15-16页 |
| ·国内海水灌溉技术的发展 | 第16-18页 |
| ·芦荟简介 | 第18-26页 |
| ·芦荟的种类 | 第18-21页 |
| ·芦荟的化学成份 | 第21-23页 |
| ·芦荟的药效 | 第23-26页 |
| ·芦荟多糖的研究现状 | 第26-34页 |
| ·芦荟多糖化学组成与结构 | 第26-29页 |
| ·芦荟多糖含量分析 | 第29-31页 |
| ·芦荟多糖的生物活性 | 第31-34页 |
| ·植物多糖的免疫调节机制 | 第34-39页 |
| ·对巨噬细胞功能的影响 | 第34-38页 |
| ·对B细胞功能的影响 | 第38页 |
| ·对T细胞功能的影响 | 第38页 |
| ·对NK细胞的影响 | 第38页 |
| ·对细胞因子的作用 | 第38页 |
| ·对机体第二信使水平的影响 | 第38-39页 |
| ·植物多糖的抗肿瘤机制 | 第39-41页 |
| ·增强宿主免疫功能而发挥抗肿瘤作用 | 第39页 |
| ·直接的细胞毒作用 | 第39-40页 |
| ·抗突变、抗遗传损伤作用 | 第40页 |
| ·抗氧化、清除自由基作用 | 第40-41页 |
| ·诱导肿瘤细胞凋亡 | 第41页 |
| ·抑制肿瘤血管形成的研究 | 第41页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第41-43页 |
| 2 海水灌溉下库拉索芦荟的活性成份分析 | 第43-58页 |
| ·实验材料及设备 | 第44-45页 |
| ·实验材料 | 第44页 |
| ·设备 | 第44-45页 |
| ·试剂 | 第45页 |
| ·实验方法 | 第45-50页 |
| ·芦荟全叶汁的制备 | 第45页 |
| ·分析方法 | 第45-50页 |
| ·数据分析 | 第50页 |
| ·结果与讨论 | 第50-57页 |
| ·海水灌溉下库拉索芦荟的产量 | 第50-51页 |
| ·海水灌溉下库拉索芦荟活性成分的含量 | 第51-57页 |
| ·小结 | 第57-58页 |
| 3 海水灌溉库拉索芦荟多糖的分离纯化及结构解析 | 第58-81页 |
| ·实验材料及设备 | 第58-60页 |
| ·实验材料 | 第58页 |
| ·设备 | 第58-60页 |
| ·试剂 | 第60页 |
| ·实验方法 | 第60-63页 |
| ·芦荟凝胶粗多糖(GAPS)和芦荟皮粗多糖(SAPS)的提取 | 第60-62页 |
| ·芦荟粗多糖的分级纯化 | 第62页 |
| ·GAPS-A和SAPS-A的进一步分级 | 第62页 |
| ·芦荟多糖的纯度鉴定及分子量的测定 | 第62页 |
| ·芦荟多糖的紫外光谱分析 | 第62-63页 |
| ·芦荟多糖的红外光谱分析 | 第63页 |
| ·芦荟多糖的单糖组成分析 | 第63页 |
| ·芦荟多糖的NMR分析 | 第63页 |
| ·结果与讨论 | 第63-79页 |
| ·芦荟粗多糖中游离蛋白的去除方法 | 第63-67页 |
| ·芦荟皮多糖提取液的脱色 | 第67-68页 |
| ·芦荟粗多糖(GAPS和SAPS)的分离与纯化 | 第68-69页 |
| ·芦荟多糖的纯度鉴定及分子量的测定 | 第69-70页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1的紫外光谱分析 | 第70-71页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1的红外光谱分析 | 第71-72页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1的单糖组成分析 | 第72-73页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1的NMR分析 | 第73-79页 |
| ·小结 | 第79-81页 |
| 4 GAPS-1和SAPS-1的体外抗氧化活性 | 第81-91页 |
| ·实验材料及设备 | 第82页 |
| ·实验材料 | 第82页 |
| ·设备 | 第82页 |
| ·试剂 | 第82页 |
| ·实验方法 | 第82-84页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对超氧阴离子(O_2~(?))自由基的清除作用 | 第82-83页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对Fe~(2+)的螯合作用 | 第83页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对羟自由基(·OH)的清除作用 | 第83页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对H_2O_2的清除作用 | 第83页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1的还原能力的测定 | 第83页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对脂质过氧化抑制作用的测定 | 第83-84页 |
| ·数据处理 | 第84页 |
| ·结果与讨论 | 第84-90页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对超氧阴离子(O_2~(?))自由基的清除作用 | 第84-85页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对Fe~(2+)的螯合作用 | 第85-86页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对羟自由基(OH)的清除作用 | 第86-87页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对H_2O_2的清除作用 | 第87页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1的还原能力的测定 | 第87-89页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对脂质过氧化的抑制作用 | 第89-90页 |
| ·小结 | 第90-91页 |
| 5 GAPS-1和SAPS-1的体外抗肿瘤活性 | 第91-96页 |
| ·实验材料及设备 | 第91-92页 |
| ·实验材料 | 第91页 |
| ·设备 | 第91-92页 |
| ·试剂 | 第92页 |
| ·实验方法 | 第92-93页 |
| ·细胞传代 | 第92页 |
| ·细胞存活率的检测 | 第92-93页 |
| ·数据分析 | 第93页 |
| ·结果 | 第93-95页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对Hela细胞活性的影响 | 第93-94页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对MCF-7细胞活性的影响 | 第94页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对BGC细胞活性的影响 | 第94-95页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1的细胞毒性实验 | 第95页 |
| ·讨论 | 第95-96页 |
| 6 GAPS-1和SAPS-1对脾细胞活性的影响 | 第96-103页 |
| ·实验材料及设备 | 第96-97页 |
| ·实验材料 | 第96页 |
| ·设备 | 第96-97页 |
| ·试剂 | 第97页 |
| ·实验方法 | 第97-98页 |
| ·脾细胞的制备 | 第97页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对正常大鼠脾细胞增殖的影响 | 第97页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对刀豆蛋白A诱导的大鼠脾细胞增殖的影响 | 第97-98页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对紫外线损伤的大鼠脾脏淋巴细胞的保护实验 | 第98页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对紫外线损伤的大鼠脾细胞活性的修复实验 | 第98页 |
| ·数据分析 | 第98页 |
| ·结果 | 第98-101页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对脾细胞增殖活性的影响 | 第98-99页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对刀豆蛋白A诱导的大鼠脾细胞增殖的影响 | 第99页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1预先给药对紫外线损伤脾细胞的保护作用 | 第99-100页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对紫外线损伤的大鼠脾细胞活性的修复作用 | 第100-101页 |
| ·讨论 | 第101-103页 |
| 7 GAPS-1和SAPS-1对小鼠单核巨噬细胞活性的影响 | 第103-108页 |
| ·实验材料及设备 | 第103-104页 |
| ·实验材料 | 第103页 |
| ·设备 | 第103-104页 |
| ·试剂 | 第104页 |
| ·实验方法 | 第104-105页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对RAW264.7细胞活性的影响 | 第104页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对RAW264.7细胞吞噬中性红(NR)的影响 | 第104页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对RAW264.7细胞杀伤Hela细胞能力的影响 | 第104-105页 |
| ·数据分析 | 第105页 |
| ·结果 | 第105-106页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对RAW264.7细胞的增殖作用 | 第105-106页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对RAW264.7细胞吞噬中性红的影响 | 第106页 |
| ·GAPS-1和SAPS-1对RAW264.7细胞杀伤Hela细胞能力的影响 | 第106页 |
| ·讨论 | 第106-108页 |
| 结论 | 第108-110页 |
| 创新点 | 第110-111页 |
| 展望 | 第111-112页 |
| 参考文献 | 第112-128页 |
| 附录A 文中所用英文简写及其全称 | 第128-129页 |
| 攻读博士学位期间发表学术论文情况 | 第129-130页 |
| 致谢 | 第130-131页 |
