| 缩略语表 | 第6-9页 |
| 中文摘要 | 第9-14页 |
| Abstract | 第14-19页 |
| 前言 | 第20-22页 |
| 文献回顾 | 第22-31页 |
| 1 房颤的研究进展 | 第22-25页 |
| 1.1 房颤的电生理机制 | 第22-23页 |
| 1.2 自主神经与房颤 | 第23-25页 |
| 1.2.1 副交感神经与房颤的关系 | 第23-24页 |
| 1.2.2 交感神经与房颤的关系 | 第24页 |
| 1.2.3 交感神经与副交感神经相互作用对房颤的影响 | 第24-25页 |
| 2 岛叶与自主神经研究 | 第25-26页 |
| 3 心脏电生理标测技术的历史研究及现状 | 第26-29页 |
| 3.1 心脏标测技术概述 | 第26-27页 |
| 3.2 小动物电学标测历史与应用现状 | 第27-29页 |
| 3.2.1 体表电位标测 | 第27-28页 |
| 3.2.2 心内膜标测 | 第28页 |
| 3.2.3 心外膜标测 | 第28-29页 |
| 4 啮齿类动物在体房颤模型 | 第29-31页 |
| 第一部分 大鼠心脏立体定位心外膜标测系统的研制 | 第31-41页 |
| 1 心脏立体定位仪设计 | 第31-38页 |
| 1.1 立体定位器 | 第32-33页 |
| 1.2 心脏复位器 | 第33-34页 |
| 1.3 万向定位旋转电极夹持器 | 第34-38页 |
| 2 大鼠心外膜标测电极 | 第38-40页 |
| 3 日本光电程序刺激仪 | 第40-41页 |
| 4 生物信号采集器 | 第41页 |
| 第二部分 CREAMS系统有效性测试实验 | 第41-56页 |
| 1 大鼠心房外膜及肺静脉电生理标测功能检测 | 第41-47页 |
| 1.1 材料 | 第41-42页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第41-42页 |
| 1.1.2 实验材料 | 第42页 |
| 1.2 方法 | 第42-47页 |
| 1.2.1 麻醉及一般准备 | 第42页 |
| 1.2.2 心脏手术 | 第42-43页 |
| 1.2.3 CREAMS使用及心外膜电生理标测操作 | 第43-44页 |
| 1.2.4 电生理检查 | 第44页 |
| 1.2.5 实验结果 | 第44-47页 |
| 1.2.5.1 成功标测6个位点单极心外膜标测 | 第44页 |
| 1.2.5.2 成功标测6个位点ERP | 第44-46页 |
| 1.2.5.3 成功标测6个位点WOV | 第46-47页 |
| 2 CREAMS系统立体定位功能使用及检测 | 第47-50页 |
| 2.1 立体定位功能操作 | 第47-48页 |
| 2.2 立体定位功能精确性检测 | 第48页 |
| 2.3 统计学处理 | 第48-49页 |
| 2.4 实验结果 | 第49-50页 |
| 3 讨论 | 第50-56页 |
| 3.1 使用CREAMS系统标测与现存标测技术的比较 | 第50-51页 |
| 3.2 CREAMS系统对AF电生理评价的意义 | 第51-53页 |
| 3.3 CREAMS系统电生理标测的局限性 | 第53-56页 |
| 第三部分 CREAMS系统用于在体大鼠房颤模型的实用性功能评测 | 第56-63页 |
| 实验一 高频刺激左房及肺静脉交界处对大鼠心房电生理特性及AF易感性的影响 | 第56-59页 |
| 1.1 材料 | 第56页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第56页 |
| 1.1.2 实验材料 | 第56页 |
| 1.2 方法 | 第56-57页 |
| 1.3 统计学处理 | 第57页 |
| 1.4 实验结果 | 第57-59页 |
| 实验二 CREAMS系统用于低强度迷走神经刺激术对在体大鼠AF的研究 | 第59-63页 |
| 1.1 实验方法 | 第59-60页 |
| 1.1.1 实验分组 | 第59页 |
| 1.1.2 实验动物准备 | 第59页 |
| 1.1.3 LL-VNS | 第59-60页 |
| 1.1.4 电生理检查 | 第60页 |
| 1.1.5 实验方案 | 第60页 |
| 1.1.6 统计学处理 | 第60页 |
| 1.2 结果 | 第60-62页 |
| 1.2.1 对照组和ACh-Ca Cl2组电生理检测比较 | 第60-61页 |
| 1.2.2 对照组与LL-VNS电生理检查比较 | 第61页 |
| 1.2.3 ACh-CaCl2组和LL-VNS组电生理检测比较 | 第61-62页 |
| 1.3 讨论 | 第62-63页 |
| 第四部分 左侧岛叶后段对房颤的调控 | 第63-88页 |
| 1 材料 | 第64页 |
| 1.1 实验动物 | 第64页 |
| 1.2 实验材料 | 第64页 |
| 2 方法 | 第64-69页 |
| 2.1 实验分组 | 第64-65页 |
| 2.2 注射病毒及检验 | 第65-66页 |
| 2.3 脑内置管 | 第66页 |
| 2.4 DBS微刺激电极置入 | 第66页 |
| 2.5 LPIC电刺激 | 第66-67页 |
| 2.6 大鼠急性AF模型制作及心脏在体电生理检查 | 第67页 |
| 2.7 组织化学鉴定 | 第67页 |
| 2.8 电生理学鉴定 | 第67-69页 |
| 2.8.1 电生理取材与切片 | 第67页 |
| 2.8.2 全细胞膜片钳记录 | 第67-68页 |
| 2.8.3 化学遗传学病毒对LPIC神经元细胞动作电位效应的观察 | 第68-69页 |
| 3 统计学分析 | 第69页 |
| 4 实验结果 | 第69-84页 |
| 4.1 LPIC电刺激位点组织学染色结果 | 第69页 |
| 4.2 电生理检测结果 | 第69-76页 |
| 4.2.1 急性局灶性AF模型有效性 | 第69-70页 |
| 4.2.2 LPIC脑深部刺激对心房电生理特性及AF的影响 | 第70-72页 |
| 4.2.3 LPIC兴奋后对AF调节的可能路径 | 第72-76页 |
| 4.3 化学遗传学病毒鉴定结果 | 第76-78页 |
| 4.3.1 化学遗传学病毒明显抑制LPIC神经元细胞的兴奋性 | 第76-78页 |
| 4.4 化学遗传学病毒抑制LPIC组及各分组电生理检测比较 | 第78-84页 |
| 4.4.1 急性AF模型有效性 | 第78-79页 |
| 4.4.2 HM4Di抑制LPIC对心房电生理特性及AF的影响 | 第79-81页 |
| 4.4.3 HM4Di抑制LPIC对AF调节的可能路径 | 第81-84页 |
| 5 讨论 | 第84-88页 |
| 第五部分 岛叶支配房颤通路的形态学研究 | 第88-95页 |
| 1 材料 | 第88页 |
| 1.1 实验动物 | 第88页 |
| 1.2 实验材料 | 第88页 |
| 2 方法 | 第88-90页 |
| 2.1 脑立体定位注射 | 第88页 |
| 2.2 LPIC传出纤维的联系研究 | 第88-89页 |
| 2.3 动物灌流固定和切片 | 第89页 |
| 2.4 免疫组化和免疫荧光染色及观察 | 第89页 |
| 2.5 结果统计和分析 | 第89-90页 |
| 3 结果 | 第90-92页 |
| 3.1 注射PHA-L向LPIC顺行标记的脑区及核团 | 第90-92页 |
| 4 讨论 | 第92-95页 |
| 小结 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-105页 |
| 附录 | 第105-108页 |
| 附录1：DBS实验电生理统计数据 | 第105-106页 |
| 附录2：化学遗传学实验电生理统计数据 | 第106-108页 |
| 研究成果 | 第108-109页 |
