| 缩略语表 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-13页 |
| 英文摘要 | 第13-21页 |
| 前言 | 第21-25页 |
| 文献回顾 | 第25-52页 |
| 正文 | 第52-88页 |
| 1 ILK 与N-cadherin、β-catenin、FOX01A 在STZ 诱导的糖尿病大鼠视网膜中的表达 | 第52-73页 |
| ·引言 | 第52-54页 |
| ·实验方法 | 第54-60页 |
| ·糖尿病动物模型 | 第54-55页 |
| ·视网膜微血管渗透性测量 | 第55页 |
| ·视网膜组织切片和视网膜消化的准备 | 第55-56页 |
| ·半定量RT-PCR | 第56-57页 |
| ·免疫组织化学 | 第57-58页 |
| ·Western blot分析 | 第58-60页 |
| ·统计分析 | 第60页 |
| ·实验结果 | 第60-69页 |
| ·大鼠体重和血糖水平的变化 | 第60-61页 |
| ·STZ诱导的糖尿病大鼠视网膜微血管渗透性增 | 第61页 |
| ·STZ诱导的糖尿病大鼠视网膜ILK表达水平 | 第61-64页 |
| ·STZ诱导的糖尿病大鼠视网膜FOX01A表达 | 第64-65页 |
| ·STZ诱导的糖尿病大鼠视网膜Akt表达的活性 | 第65-66页 |
| ·STZ诱导的糖尿病大鼠视网膜N-cadherin表达 | 第66-68页 |
| ·STZ诱导的糖尿病大鼠视网膜β-catenin表达 | 第68-69页 |
| ·讨论 | 第69-73页 |
| 2 ILK 和FOXO 1A 在高糖条件下培养的牛视网膜微血管周细胞的表达 | 第73-88页 |
| ·引言 | 第73-74页 |
| ·实验方法 | 第74-79页 |
| ·牛视网膜微血管周细胞的原代培养 | 第74-76页 |
| ·流式细胞仪检测高糖诱导的周细胞凋亡 | 第76-77页 |
| ·免疫细胞化学分析 | 第77页 |
| ·Western blot 分析 | 第77-79页 |
| ·统计分析 | 第79页 |
| ·实验结果 | 第79-85页 |
| ·牛视网膜微血管周细胞生长形态观察及鉴定 | 第79-80页 |
| ·周细胞生长规律 | 第80-81页 |
| ·流式细胞仪检测高糖诱导的牛视网膜微血管周细胞凋亡 | 第81-82页 |
| ·高糖诱导的牛视网膜微血管周细胞的 ILK 表达 | 第82-83页 |
| ·高糖诱导的牛视网膜微血管周细胞 FOX01A 表达 | 第83-85页 |
| ·讨论 | 第85-88页 |
| 小结 | 第88-90页 |
| 参考文献 | 第90-104页 |
| 个人简历和研究成果 | 第104-105页 |
| 致谢 | 第105页 |
