摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-12页 |
引言 | 第12页 |
1 文献综述: | 第12-37页 |
·气孔运动和保卫细胞信号转导研究概述 | 第12-14页 |
·保卫细胞的特点 | 第12-13页 |
·气孔运动机理 | 第13-14页 |
·NO与气孔运动 | 第14-19页 |
·NO生物学活性的发现 | 第14页 |
·植物NO产生途径 | 第14-16页 |
·一氧化氮合酶(NOS)途径 | 第14-15页 |
·硝酸还原酶/亚硝酸还原酶(NR/iNR)途径 | 第15-16页 |
·黄嘌呤氧化还原酶(XOR)途径 | 第16页 |
·非酶促途径(Non-enzymatic system) | 第16页 |
·植物NO信号转导途径 | 第16-17页 |
·NO参与调控气孔运动 | 第17-19页 |
·H_2O_2与气孔运动 | 第19-24页 |
·活性氧与H_2O_2 | 第19页 |
·植物体内H_2O_2产生途径和代谢 | 第19-21页 |
·植物H_2O_2信号传递途径 | 第21-22页 |
·H_2O_2参与调控气孔运动 | 第22-24页 |
·NO和H_2O_2在气孔运动中的相互作用 | 第24-25页 |
·UV-B辐射与气孔运动 | 第25-32页 |
·UV-B辐射增强——紧迫的环境问题 | 第25-26页 |
·UV-B辐射对植物的影响 | 第26-29页 |
·UV-B辐射增强对气孔运动的影响 | 第29-30页 |
·NO和H_2O_2在UV-B信号转导中的作用 | 第30-32页 |
·细胞分裂素与气孔运动 | 第32-34页 |
·生长素与气孔运动 | 第34-36页 |
·选题目的及意义 | 第36-37页 |
2 材料与方法 | 第37-39页 |
·植物材料及培养 | 第37页 |
·主要化学试剂及仪器 | 第37-38页 |
·UV-B辐射处理 | 第38页 |
·表皮条的剥离、处理与分析 | 第38页 |
·NO和H_2O_2荧光探针装载 | 第38页 |
·激光扫描共聚焦显微检测 | 第38-39页 |
3 结果与分析 | 第39-48页 |
·CTK、Auxin对UV-B诱导气孔关闭的影响及其与保卫细胞内源NO、H_2O_2的关系 | 第39-42页 |
·KT、6-BA及ZT对UV-B诱导气孔关闭的影响 | 第39-40页 |
·IAA、NAA及2,4-D对UV-B诱导气孔关闭的影响 | 第40页 |
·c-PTIO、HB及L-NAME对UV-B诱导气孔关闭的影响 | 第40-41页 |
·ASA、CAT、SHAM和DPI对UV-B诱导气孔关闭的影响 | 第41页 |
·CTK、Auxin对UV-B辐射下保卫细胞内源NO水平的影响 | 第41页 |
·CTK、Auxin对UV-B辐射下保卫细胞内源H_2O_2水平的影响 | 第41-42页 |
·CTK和Auxin对UV-B辐射下已关闭气孔的影响及其与保卫细胞内源NO、H_2O_2的关系 | 第42-48页 |
·KT、6-BA、ZT对UV-B辐射下已关闭气孔的影响 | 第42-43页 |
·IAA、NAA、2,4-D对UV-B辐射下已关闭气孔的影响 | 第43页 |
·c-PTIO和L-NAME对UV-B辐射下保卫细胞已产生内源NO水平的影响 | 第43-44页 |
·KT、6-BA、ZT对UV-B辐射下保卫细胞已产生内源NO水平的影响 | 第44-45页 |
·IAA、NAA、2,4-D对UV-B辐射下保卫细胞已产生内源NO水平的影响 | 第45-46页 |
·ASA和SHAM对UV-B辐射下保卫细胞己产生内源H_2O_2水平的影响 | 第46页 |
·KT、6-BA、ZT对UV-B辐射下保卫细胞已产生内源H_2O_2水平的影响 | 第46-47页 |
·IAA、NAA、2,4-D对UV-B辐射下保卫细胞已产生内源H_2O_2水平的影响 | 第47-48页 |
4 讨论 | 第48-51页 |
结论 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-69页 |
图版Ⅰ: CTK、Auxin对UV-B辐射下保卫细胞内源NO水平的影响 | 第69-70页 |
图版Ⅱ: CTK、Auxin对UV-B辐射下保卫细胞内源H_2O_2水平的影响 | 第70-71页 |
图版Ⅲ: CTK、Auxin对UV-B辐射下保卫细胞已产生NO水平的影响 | 第71-72页 |
图版Ⅳ: CTK、Auxin对UV-B辐射下保卫细胞已产生H_2O_2水平的影响 | 第72-73页 |
致谢 | 第73-74页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第74页 |