| 略语表 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-26页 |
| ·黄瓜花叶病毒 | 第15-18页 |
| ·CMV 概述 | 第15页 |
| ·CMV 基因组结构及其功能 | 第15-16页 |
| ·CMV 卫星RNA | 第16-18页 |
| ·miRNAs 概述 | 第18-22页 |
| ·RNA 沉默与miRNA 的发现 | 第18-19页 |
| ·miRNA 在植物中的分布 | 第19-20页 |
| ·植物miRNA 的形成与调控 | 第20-21页 |
| ·植物miRNA 的功能 | 第21-22页 |
| ·miRNA 参与植物的生长发育 | 第21页 |
| ·miRNA 参与叶和根的发育 | 第21-22页 |
| ·miRNA 参与花的发育及性别决定 | 第22页 |
| ·miRNA 参与植物的信号转导 | 第22页 |
| ·miRNA 在其他方面的功能 | 第22页 |
| ·番茄及侵染番茄植株的主要病毒 | 第22-23页 |
| ·病毒-寄主互作与miRNA 调控途径的关系 | 第23-24页 |
| ·实时荧光定量PCR 技术 | 第24-25页 |
| ·本论文的研究内容与目的 | 第25-26页 |
| ·本论文的研究内容 | 第25页 |
| ·本论文的研究目的及意义 | 第25-26页 |
| 第二章 黄瓜花叶病毒基因时序表达差异与致病相关性研究 | 第26-41页 |
| ·材料与方法 | 第27-33页 |
| ·寄主植物 | 第27页 |
| ·病毒接种 | 第27页 |
| ·酶与试剂 | 第27-28页 |
| ·T1-satRNA 和Yn12-satRNA 的体外转录 | 第28-29页 |
| ·大量抽取植物中黄瓜花叶病毒双链RNA | 第29页 |
| ·植物总RNA 提取 | 第29-31页 |
| ·引物的筛选 | 第31页 |
| ·RT-PCR 扩增 | 第31-32页 |
| ·荧光定量PCR | 第32页 |
| ·数据处理 | 第32-33页 |
| ·结果与分析 | 第33-39页 |
| ·致弱卫星Yn12 和非致弱卫星T1 的体外转录 | 第33-34页 |
| ·病毒侵染后在番茄上引起的症状 | 第34页 |
| ·病毒侵染番茄35 天后抽dsRNA 结果 | 第34-35页 |
| ·荧光定量PCR 扩增引物的验证 | 第35-37页 |
| ·荧光定量PCR 分析不同CMV-Fny 基因时序表达差异 | 第37-39页 |
| ·小结与讨论 | 第39-41页 |
| 第三章 病毒侵染引起番茄miRNA 差异表达的研究 | 第41-53页 |
| ·材料方法 | 第42-45页 |
| ·寄主和毒源 | 第42页 |
| ·酶与试剂 | 第42页 |
| ·总RNA 提取 | 第42页 |
| ·miRNA 引物设计 | 第42-44页 |
| ·cDNA 第一链的合成 | 第44页 |
| ·荧光定量PCR 过程 | 第44-45页 |
| ·荧光定量PCR 结果的处理 | 第45页 |
| ·实验结果 | 第45-50页 |
| ·侵染病毒后番茄症状 | 第45-46页 |
| ·引物扩增特异性的验证 | 第46-48页 |
| ·miRNAs 的real-time RT-PCR 检测结果 | 第48-49页 |
| ·miRNA 检测结果分析 | 第49-50页 |
| ·小结与讨论 | 第50-53页 |
| 第四章 番茄miRNA 的靶标m RNA 对病毒侵染的响应 | 第53-63页 |
| ·材料与方法 | 第54-56页 |
| ·寄主和毒源 | 第54页 |
| ·酶与试剂 | 第54页 |
| ·总RNA 提取 | 第54页 |
| ·引物设计 | 第54页 |
| ·cDNA 第一链的合成 | 第54-55页 |
| ·荧光定量PCR 过程 | 第55-56页 |
| ·荧光定量PCR 结果的处理 | 第56页 |
| ·实验结果 | 第56-60页 |
| ·侵染病毒番茄症状 | 第56页 |
| ·引物扩增特异性的验证 | 第56-58页 |
| ·靶基因的real-time RT-PCR 检测结果 | 第58-59页 |
| ·靶基因检测结果分析 | 第59-60页 |
| ·小结与讨论 | 第60-63页 |
| 总结 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-70页 |
| 附录：重要溶液的配制 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第72页 |
