| 主要英文缩略词表 | 第1-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| 英文摘要 | 第8-10页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 第一章 农杆菌介导的四倍体刺槐甜菜碱醛脱氢酶基因高效转化体系的建立 | 第11-40页 |
| 1 材料与方法 | 第11-19页 |
| ·材料 | 第11-13页 |
| ·方法 | 第13-19页 |
| ·抗菌素的确定 | 第13-14页 |
| ·选择压的确定 | 第14页 |
| ·农杆菌介导的遗传转化方法 | 第14-15页 |
| ·GUS组织化学染色分析 | 第15页 |
| ·转化效率评价指标 | 第15页 |
| ·高效转化体系的建立 | 第15-19页 |
| ·外植体类型对转化的影响 | 第15-16页 |
| ·外植体生理状态对转化的影响 | 第16页 |
| ·预培养对转化的影响 | 第16页 |
| ·共培养培养基和共培养时间对转化的影响 | 第16页 |
| ·共培养条件对转化的影响 | 第16页 |
| ·菌液浓度对转化的影响 | 第16-17页 |
| ·侵染时间对转化的影响 | 第17页 |
| ·侵染方式对转化的影响 | 第17页 |
| ·创伤方式对转化的影响 | 第17页 |
| ·农杆菌活化状态对转化的影响 | 第17-18页 |
| ·乙酰丁香酮(AS)对转化的影响 | 第18页 |
| ·pH值对转化的影响 | 第18页 |
| ·选择方式对转化的影响 | 第18页 |
| ·抗卡那霉素(Kan)株系的建立 | 第18-19页 |
| 2 结果与分析 | 第19-36页 |
| ·抗菌素的确定 | 第19-20页 |
| ·选择压的确定 | 第20-22页 |
| ·高效转化体系的建立 | 第22-36页 |
| ·外植体类型对转化的影响 | 第22-23页 |
| ·外植体生理状态对转化的影响 | 第23-24页 |
| ·预培养对转化的影响 | 第24-25页 |
| ·共培养培养基和共培养时间对转化的影响 | 第25-27页 |
| ·共培养条件对转化的影响 | 第27-28页 |
| ·菌液浓度对转化的影响 | 第28-29页 |
| ·侵染时间对转化的影响 | 第29-30页 |
| ·侵染方式对转化的影响 | 第30-31页 |
| ·创伤方式对转化的影响 | 第31页 |
| ·农杆菌活化状态对转化的影响 | 第31-32页 |
| ·乙酰丁香酮(AS)对转化的影响 | 第32-34页 |
| ·pH值对转化的影响 | 第34-35页 |
| ·选择方式对转化的影响 | 第35-36页 |
| ·抗卡那霉素(Kan)株系的建立 | 第36页 |
| 3 讨论与小结 | 第36-40页 |
| ·讨论 | 第36-39页 |
| ·小结 | 第39-40页 |
| 第二章 转化植株的PCR检测 | 第40-47页 |
| 1 材料与方法 | 第40-45页 |
| ·材料 | 第40页 |
| ·方法 | 第40-45页 |
| ·农杆菌质粒DNA的碱法提取 | 第40-41页 |
| ·农杆菌质粒DNA的电泳检测 | 第41-42页 |
| ·植物基因组DNA的提取 | 第42-44页 |
| ·植物基因组DNA的电泳检测 | 第44页 |
| ·PCR扩增及电泳检测 | 第44-45页 |
| 2 结果与分析 | 第45-47页 |
| ·碱法提取农杆菌质粒DNA的效果 | 第45页 |
| ·CTAB与SDS法提取植物基因组DNA的效果 | 第45-46页 |
| ·PCR扩增体系的建立 | 第46页 |
| ·PCR检测结果 | 第46-47页 |
| 第三章 转基因植株的耐盐性检测 | 第47-54页 |
| 1 材料与方法 | 第47页 |
| ·材料 | 第47页 |
| ·方法 | 第47页 |
| ·不同盐浓度对转基因四倍体刺槐生长和分化的影响 | 第47页 |
| ·不同盐浓度对转基因四倍体刺槐根系发生的影响 | 第47页 |
| 2 结果与分析 | 第47-52页 |
| ·不同盐浓度对转基因四倍体刺槐生长和分化的影响 | 第47-50页 |
| ·不同盐浓度对转基因四倍体刺槐根系发生的影响 | 第50-52页 |
| 3 讨论与小结 | 第52-54页 |
| ·讨论 | 第52页 |
| ·小结 | 第52-54页 |
| 文献综述 | 第54-61页 |
| 参考文献 | 第61-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 图版 | 第72-74页 |