| 致谢 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-23页 |
| 1 鸡传染性法氏囊病研究进展 | 第9-15页 |
| ·IBDV 基因组结构 | 第9页 |
| ·IBDV 的病毒蛋白及其功能 | 第9-11页 |
| ·病毒的形态、结构、复制和繁殖 | 第11-12页 |
| ·IBDV 的毒力及其标志 | 第12-13页 |
| ·VP2 抗原结构分布与变异 | 第13-14页 |
| ·IBDV 疫苗与免疫 | 第14-15页 |
| 2 病毒受体与配体的相互作用机制研究进展 | 第15-19页 |
| ·病毒受体和病毒配体的概念 | 第15页 |
| ·病毒受体和病毒配体的生物学功能及分类 | 第15-17页 |
| ·病毒受体与病毒配体相互作用在治疗中的应用 | 第17-18页 |
| ·研究病毒受体和病毒配体常用的生物学途径 | 第18-19页 |
| ·研究病毒受体和病毒配体相互作用的意义 | 第19页 |
| 3 IBDV 受体与配体的研究进展 | 第19-22页 |
| ·IBDV 受体的研究进展 | 第19-20页 |
| ·IBDV 配体的研究进展 | 第20-22页 |
| 结语 | 第22-23页 |
| 引言 | 第23-24页 |
| 第二章 鸡传染性法氏囊病病毒VP2 蛋白配体结合表位的初步鉴定 | 第24-39页 |
| 摘要 | 第24页 |
| 引言 | 第24页 |
| 1 材料和方法 | 第24-31页 |
| ·试验材料 | 第24-25页 |
| ·主要试剂 | 第25页 |
| ·仪器设备 | 第25页 |
| ·主要试剂配制 | 第25-27页 |
| ·多肽的设计与合成 | 第27页 |
| ·鸡胚成纤维细胞（CEF）的制备 | 第27页 |
| ·病毒的感染、收获与毒力测定 | 第27-28页 |
| ·鸡传染性法氏囊病毒感染比（MOI）的测定 | 第28页 |
| ·病毒TCID50 的测定 | 第28-29页 |
| ·Sulfo-NHS-Biotin 标记多肽 | 第29页 |
| ·Pep-Biotin 与CEF 细胞结合试验 | 第29-30页 |
| ·小鼠IgG 的提纯 | 第30页 |
| ·多肽与小鼠IgG 偶联 | 第30页 |
| ·流式细胞术分析多肽结合试验和病毒阻断试验 | 第30-31页 |
| 2 结果与分析 | 第31-37页 |
| ·收获病毒抗原的测定 | 第31-32页 |
| ·IBDV 感染比（MOI）的测定 | 第32页 |
| ·病毒TCID50 的测定 | 第32-33页 |
| ·P22-Biotin 与CEF 细胞结合试验 | 第33-34页 |
| ·饱和硫酸铵法提纯moIgG | 第34-35页 |
| ·流式细胞术分析多肽结合试验和病毒阻断试验 | 第35-37页 |
| 3 结论与讨论 | 第37-39页 |
| ·多肽的设计合成与检测 | 第37页 |
| ·小鼠IgG 的提取和P22 偶联小鼠IgG | 第37-38页 |
| ·结合试验和病毒阻断结合试验 | 第38-39页 |
| 第三章 IBDV VP2 配体结合表位多肽抑制病毒感染CEF 细胞的研究 | 第39-46页 |
| 摘要 | 第39页 |
| 引言 | 第39页 |
| 1 材料与方法 | 第39-40页 |
| ·抑制感染试验 | 第39-40页 |
| 2 结果与分析 | 第40-42页 |
| ·抑制感染试验 | 第40-42页 |
| 3 结论与讨论 | 第42-45页 |
| ·筛选IBDV VP2 配体结合表位的目的和意义 | 第42-43页 |
| ·抑制试验 | 第43页 |
| ·IBDV VP2 配体结合表位多肽的抑制功效 | 第43-44页 |
| ·多肽类药物的研究与应用 | 第44-45页 |
| 4 全文结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-54页 |
| 英文摘要 | 第54-56页 |
| 英文缩略表 | 第56-58页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第58页 |