| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-14页 |
| 1 引言 | 第14-50页 |
| ·绒山羊皮肤及毛囊 | 第14-22页 |
| ·绒山羊皮肤结构特点 | 第14-16页 |
| ·毛囊的分类及结构 | 第16-17页 |
| ·毛囊的周期性变化 | 第17-19页 |
| ·毛囊各种细胞生物学特性的研究 | 第19-22页 |
| ·毛囊的体外培养及相关因子对其影响的研究进展 | 第22-36页 |
| ·毛囊培养的研究进展 | 第22-23页 |
| ·毛囊的分离方法 | 第23-25页 |
| ·游离毛囊的培养 | 第25-28页 |
| ·影响毛囊生长相关因子的研究进展 | 第28-36页 |
| ·毛囊细胞凋亡的研究进展 | 第36-43页 |
| ·细胞凋亡的概念 | 第36-39页 |
| ·Bcl-2 与细胞凋亡 | 第39-40页 |
| ·Bax 与细胞凋亡 | 第40页 |
| ·Bc1-2 和Bax 与细胞凋亡 | 第40-41页 |
| ·毛囊细胞凋亡的研究现状 | 第41-43页 |
| ·细胞凋亡的研究意义 | 第43页 |
| ·实时荧光定量 PCR 技术 | 第43-48页 |
| ·实时定量 PCR 的技术原理 | 第44页 |
| ·常用的定量 PCR 方法 | 第44-48页 |
| ·实时荧光定量 PCR 技术的应用概况 | 第48页 |
| ·本研究的目的及意义 | 第48-49页 |
| ·研究内容和方法 | 第49-50页 |
| ·主要研究内容 | 第49页 |
| ·研究方法 | 第49-50页 |
| 2 试验一 绒山羊毛囊的分离培养 | 第50-64页 |
| ·材料 | 第50页 |
| ·材料来源 | 第50页 |
| ·主要试剂 | 第50页 |
| ·主要仪器 | 第50页 |
| ·离体绒山羊皮肤毛囊的分离培养 | 第50-52页 |
| ·培养基的配制 | 第50-51页 |
| ·毛囊的分离方法 | 第51-52页 |
| ·毛囊的选取 | 第52页 |
| ·毛囊分组 | 第52页 |
| ·观测指标 | 第52页 |
| ·统计学分析 | 第52页 |
| ·试验结果 | 第52-59页 |
| ·培养初级毛囊生长长度测定 | 第52-54页 |
| ·初级毛囊在四种培养基中的生长曲线 | 第54-55页 |
| ·初级毛囊在四种培养基中的显著性检验 | 第55页 |
| ·不同培养基中体外培养的初级毛囊的形态变化 | 第55-58页 |
| ·次级毛囊的培养情况 | 第58-59页 |
| ·不同时间初级毛囊体外生长情况的比较 | 第59页 |
| ·讨论 | 第59-63页 |
| ·绒山羊毛囊的分离 | 第59-60页 |
| ·绒山羊毛囊体外培养 | 第60-62页 |
| ·绒山羊毛囊的体外生长分析 | 第62-63页 |
| ·结论 | 第63-64页 |
| 3 试验二 内蒙古绒山羊初级毛囊毛乳头细胞的分离培养 | 第64-70页 |
| ·材料 | 第64页 |
| ·材料来源 | 第64页 |
| ·主要试剂 | 第64页 |
| ·主要仪器 | 第64页 |
| ·试验方法 | 第64-66页 |
| ·培养基的配置 | 第64页 |
| ·毛乳头细胞的原代培养 | 第64-65页 |
| ·毛乳头细胞的传代培养及冷冻复苏 | 第65页 |
| ·初级毛囊毛乳头细胞生长曲线的绘制 | 第65页 |
| ·初级毛囊毛乳头细胞染色体检查 | 第65-66页 |
| ·结果 | 第66-68页 |
| ·绒山羊初级毛囊毛乳头细胞的原代培养 | 第66-67页 |
| ·绒山羊初级毛囊毛乳头细胞的生长曲线 | 第67-68页 |
| ·绒山羊初级毛囊毛乳头细胞的染色体检查 | 第68页 |
| ·讨论 | 第68-69页 |
| ·结论 | 第69-70页 |
| 4 试验三 体外培养游离山羊初级毛囊与绵羊毛囊生长的比较 | 第70-77页 |
| ·材料 | 第70页 |
| ·材料来源 | 第70页 |
| ·主要试剂 | 第70页 |
| ·主要仪器 | 第70页 |
| ·离体山羊初级毛囊及绵羊毛囊的分离培养 | 第70-71页 |
| ·培养基的配制 | 第70页 |
| ·毛囊的分离方法 | 第70-71页 |
| ·毛囊的选取 | 第71页 |
| ·观测指标 | 第71页 |
| ·统计学分析 | 第71页 |
| ·试验结果 | 第71-75页 |
| ·培养毛囊生长长度测定 | 第71-72页 |
| ·山羊及绵羊毛囊体外培养的生长曲线 | 第72-73页 |
| ·体外培养山羊及绵羊毛囊的形态 | 第73-75页 |
| ·绒山羊初级毛囊和绵羊毛囊在 Williams E 无血清培养基中的显著性检验 | 第75页 |
| ·讨论 | 第75-77页 |
| ·毛囊的分离 | 第75-76页 |
| ·毛囊的培养 | 第76-77页 |
| 5 试验四 17-β-雌二醇对体外培养毛囊生长的影响 | 第77-86页 |
| ·材料 | 第77-78页 |
| ·材料来源 | 第77页 |
| ·仪器与主要试剂 | 第77-78页 |
| ·试验方法 | 第78-79页 |
| ·主要试剂的配制 | 第78页 |
| ·绒山羊初级毛囊的分离 | 第78-79页 |
| ·毛囊的选取 | 第79页 |
| ·毛囊分组 | 第79页 |
| ·观测指标 | 第79页 |
| ·统计学分析 | 第79页 |
| ·试验结果 | 第79-84页 |
| ·17β-E2对绒山羊初级毛囊体外培养生长速度的影响 | 第79-80页 |
| ·不同浓度17β-E2中绒山羊初级毛囊的生长曲线 | 第80-81页 |
| ·17β-E2对绒山羊初级毛囊生长形态的影响 | 第81-83页 |
| ·初级毛囊在添加了不同浓度17-β-雌二醇的培养基中的显著性检验 | 第83-84页 |
| ·讨论 | 第84-86页 |
| 6 试验五 山羊皮肤毛囊中 Bcl-2、Bax 基因表达 | 第86-96页 |
| ·材料与方法 | 第86-89页 |
| ·试验材料 | 第86页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第86页 |
| ·PCR 引物的设计及合成 | 第86-87页 |
| ·山羊皮肤毛囊总 RNA 的提取及检测 | 第87-89页 |
| ·RT-PCR 产物cDNA 的序列测定 | 第89页 |
| ·序列分析 | 第89页 |
| ·结果 | 第89-94页 |
| ·山羊皮肤毛囊总 RNA 的检测结果 | 第89-90页 |
| ·山羊皮肤毛囊 RT-PCR 扩增结果 | 第90-91页 |
| ·山羊皮肤毛囊 PCR 产物的序列分析结果 | 第91-92页 |
| ·山羊 Bcl-2cDNA 与其他哺乳动物的 Bcl-2cDNA 的同源性比较 | 第92页 |
| ·山羊 Bcl-2 于其它哺乳动物 Bcl-2 氨基酸序列的同源性分析 | 第92-93页 |
| ·山羊 Bax cDNA 与其它哺乳动物的 Bax cDNA 的同源性比较 | 第93-94页 |
| ·山羊 Bax 部分氨基酸序列与其它哺乳动物 Bax 的同源性 | 第94页 |
| ·讨论 | 第94-96页 |
| 7 试验六 17-β-雌二醇对毛囊体外培养过程中 Bcl-2、Bax mRNA 表达的影响 | 第96-109页 |
| ·材料 | 第96页 |
| ·试验材料 | 第96页 |
| ·仪器及试剂 | 第96页 |
| ·PCR 引物的设计及合成 | 第96页 |
| ·方法 | 第96-100页 |
| ·毛囊总 RNA 的提取 | 第96-97页 |
| ·实时荧光定量 RT-PCR 检测培养毛囊 Bcl-2、Bax 表达的方法 | 第97-100页 |
| ·试验数据处理 | 第100页 |
| ·结果 | 第100-107页 |
| ·总 RNA 的电泳检测 | 第100-101页 |
| ·荧光定量 RT-PCR 检测培养的毛囊 Bcl-2、Bax 表达定量方法的确定 | 第101-105页 |
| ·添加17-β-雌二醇对培养毛囊Bcl-2 和Bax 表达的影响 | 第105-107页 |
| ·讨论 | 第107-109页 |
| 8 结论 | 第109-110页 |
| 致谢 | 第110-111页 |
| 参考文献 | 第111-129页 |
| 作者简介 | 第129-130页 |
| 附录 | 第130-131页 |
