中文摘要 | 第1-5页 |
英文摘要 | 第5-7页 |
本文缩写符号说明 | 第7-11页 |
前言 | 第11-12页 |
第一部分 文献综述 | 第12-26页 |
1. 大豆抗原蛋白的结构分类和理化特性 | 第12-14页 |
2 大豆主要抗原蛋白的实验室分离测定方法 | 第14-17页 |
·冷沉淀法 | 第14页 |
·等电点沉淀法 | 第14页 |
·盐析法 | 第14-15页 |
·离子沉淀分离法 | 第15页 |
·免疫法 | 第15页 |
·其他分离方法 | 第15-17页 |
3 大豆球蛋白、B-伴大豆球蛋白对动物肠道细胞作用机理研究进展 | 第17-25页 |
·对动物肠道细胞数量形态的影响 | 第18-19页 |
·对动物肠细胞营养代谢的影响 | 第19-21页 |
·抗原蛋白对动物可能的致敏机理 | 第21-25页 |
4. 存在的问题 | 第25-26页 |
第二部分 本研究的目的、内容意义 | 第26-27页 |
1 研究目的 | 第26页 |
2 研究内容 | 第26页 |
3 研究意义 | 第26-27页 |
第三部分 试验研究 | 第27-79页 |
试验一 大豆球蛋白、B-伴大豆球蛋白的分离纯化 | 第27-34页 |
1 材料与方法 | 第27-28页 |
·实验样品 | 第27页 |
·主要试剂 | 第27页 |
·主要仪器设备 | 第27页 |
·11S和7S球蛋白的提取分离 | 第27-28页 |
·11S和7S球蛋白的纯化 | 第28页 |
·样品中蛋白质含量的测定 | 第28页 |
·大豆球蛋白和B-伴大豆球蛋白的鉴定 | 第28页 |
2 试验结果 | 第28-31页 |
·分级纯化总蛋白含量 | 第28-29页 |
·粗11S组分和7S组分凝胶过滤图 | 第29-30页 |
·SDS-PAGE电泳 | 第30-31页 |
3 讨论 | 第31-33页 |
4. 小结 | 第33-34页 |
试验二 大豆球蛋白、B—伴球蛋白对体外培养小鼠肠上皮细胞完整性和功能的影响 | 第34-59页 |
1 材料与方法 | 第34-37页 |
·试验动物 | 第34页 |
·主要试剂 | 第34页 |
·主要仪器 | 第34页 |
·主要试液的配制 | 第34-35页 |
·试验方法 | 第35-36页 |
·细胞的原代分离 | 第35页 |
·细胞的培养 | 第35页 |
·实验设计 | 第35-36页 |
·考察指标 | 第36页 |
·细胞的观察 | 第36页 |
·细胞培养液指标测定 | 第36页 |
·细胞内容物指标测定 | 第36页 |
·细胞存活率测定 | 第36页 |
·数据处理和统计分析 | 第36-37页 |
2 试验结果 | 第37-50页 |
3 讨论 | 第50-58页 |
·大豆抗原蛋白对小鼠肠上皮细胞的完整性的影响 | 第50-52页 |
·大豆抗原蛋白抑制小鼠肠上皮细胞增殖 | 第52-54页 |
·大豆抗原蛋白降低小鼠肠上皮细胞的蛋白质沉积 | 第54-56页 |
·大豆抗原蛋白影响小鼠肠上皮细胞的功能 | 第56-58页 |
4. 小结 | 第58-59页 |
试验三 大豆球蛋白、β—伴球蛋白对体外培养小鼠肠上皮细胞营养物质吸收相关基因表达的影响 | 第59-72页 |
1 材料与方法 | 第59-61页 |
·材料 | 第59页 |
·主要试剂 | 第59页 |
·主要仪器 | 第59页 |
·实验方法 | 第59-61页 |
·引物的设计与合成 | 第59-60页 |
·小鼠肠上皮细胞的制备与样品的处理 | 第60页 |
·总RNA的提取 | 第60页 |
·逆转录 | 第60页 |
·PEPT1、DMT1基因SYBR Green Ⅱ实时荧光定量PCR方法的建立 | 第60-61页 |
·统计分析 | 第61页 |
2 试验结果 | 第61-69页 |
3 讨论 | 第69-71页 |
4.小结 | 第71-72页 |
试验四大豆球蛋白、β—伴球蛋白对体外培养小鼠肠上皮细胞免疫功能的影响 | 第72-79页 |
1 材料与方法 | 第72页 |
2 试验结果 | 第72-77页 |
3. 讨论 | 第77-78页 |
4. 小结 | 第78-79页 |
第四部分 全文总体讨论与结论 | 第79-82页 |
1 总体讨论 | 第79-80页 |
2 总体结论 | 第80-81页 |
3. 本研究的创新点 | 第81页 |
4. 有待进一步研究的问题 | 第81-82页 |
参考文献 | 第82-92页 |
致谢 | 第92-93页 |
攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第93页 |