| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 引言 | 第14-15页 |
| 第一章 实验材料和方法 | 第15-24页 |
| 1.1 实验材料 | 第15-16页 |
| 1.1.1 主要实验试剂 | 第15-16页 |
| 1.1.2 主要实验仪器 | 第16页 |
| 1.2 实验方法 | 第16-23页 |
| 1.2.1 动物模型的分组以及处理 | 第16-17页 |
| 1.2.1.1 动物分组 | 第16页 |
| 1.2.1.2 建立与处理动物模型 | 第16-17页 |
| 1.2.2 在体实验 | 第17-18页 |
| 1.2.2.1 Elisa | 第17页 |
| 1.2.2.2 HE染色 | 第17-18页 |
| 1.2.3 体外实验 | 第18-23页 |
| 1.2.3.1 肠巨噬细胞的分离、培养及鉴定 | 第18-19页 |
| 1.2.3.1.1 肠巨噬细胞的分离和培养 | 第18页 |
| 1.2.3.1.2 肠巨噬细胞的鉴定 | 第18-19页 |
| 1.2.3.2 qRT-PCR | 第19-21页 |
| 1.2.3.2.1 总RNA的提取 | 第19页 |
| 1.2.3.2.2 第一链cDNA的合成 | 第19-20页 |
| 1.2.3.2.3 TREM-1、NF-κB、PPAR-γ、iNOS、Arg-1、IFN-γ、IL-4基因qRT-PCR | 第20-21页 |
| 1.2.3.3 Western blotting | 第21-23页 |
| 1.3 统计学方法 | 第23-24页 |
| 第二章 实验结果 | 第24-33页 |
| 2.1 SAP大鼠模型的鉴别 | 第24页 |
| 2.2 胰腺组织及肠黏膜组织病理变化 | 第24-26页 |
| 2.2.1 显微镜下胰腺组织的病理变化 | 第24-25页 |
| 2.2.2 显微镜下肠黏膜组织的病理变化 | 第25-26页 |
| 2.3 Elisa法检测各组大鼠外周血TREM-1、IFN-γ、iNOS、Arg-1和IL-4的水平 | 第26-27页 |
| 2.4 肠巨噬细胞的分离、培养及鉴定结果 | 第27-28页 |
| 2.5 qRT-PCR检测肠巨噬细胞TREM-1、iNOS、IFN-γ、NF-κB、Arg-1、IL-4和PPAR-γ的表达 | 第28-31页 |
| 2.6 Western blotting | 第31-33页 |
| 第三章 讨论 | 第33-42页 |
| 3.1 SAP大鼠模型的建立 | 第33-34页 |
| 3.2 TREM-1抑制剂LP17 | 第34页 |
| 3.3 NF-κB抑制剂PDTC | 第34-35页 |
| 3.4 肠道黏膜屏障功能损伤与SAP | 第35页 |
| 3.5 肠巨噬细胞的分型以及在SAP时肠道屏障功能中的作用 | 第35-37页 |
| 3.6 TREM-1与SAP | 第37-38页 |
| 3.7 TREM-1与巨噬细胞 | 第38-39页 |
| 3.8 TREM-1与NF-κB及PPAR-γ | 第39-42页 |
| 第四章 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-50页 |
| 综述：重症急性胰腺炎时肠黏膜屏障功能损伤机制的研究进展 | 第50-67页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 硕士攻读期间发表的文章 | 第68页 |
