| 摘要 | 第8-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第11-18页 |
| 1.1 研究的目的与意义 | 第11页 |
| 1.2 文献综述 | 第11-17页 |
| 1.2.1 ZF-HD转录因子家族的研究进展 | 第12页 |
| 1.2.2 ZF-HD转录因子家族的结构与分类 | 第12-17页 |
| 1.3 技术路线 | 第17-18页 |
| 2 材料和方法 | 第18-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第18页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第18页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-31页 |
| 2.2.1 基因筛选及生物信息学分析方法 | 第18-19页 |
| 2.2.2 番茄材料的准备 | 第19-20页 |
| 2.2.3 基因表达模式分析 | 第20-23页 |
| 2.2.4 沉默载体构建 | 第23-27页 |
| 2.2.5 技术-VIGS | 第27-28页 |
| 2.2.6 生理生化指标的测定 | 第28-30页 |
| 2.2.7 活性氧的测定 | 第30-31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-52页 |
| 3.1 番茄ZF-HD转录因子家族的生物信息学分析 | 第31-36页 |
| 3.1.1 番茄ZF-HD转录因子家族成员的筛选鉴定及特点预测 | 第31-32页 |
| 3.1.2 番茄ZF-HD转录因子家族的进化树构建 | 第32-33页 |
| 3.1.3 番茄ZF-HD转录因子家族的保守域鉴定和分析 | 第33-34页 |
| 3.1.4 番茄ZF-HD转录因子家族的染色体定位分析 | 第34-35页 |
| 3.1.5 番茄ZF-HD转录因子家族的保守元件分析 | 第35-36页 |
| 3.2 番茄ZF-HD转录因子组织特异性与非生物胁迫应答分析 | 第36-41页 |
| 3.2.1 总RNA提取 | 第36-37页 |
| 3.2.2 cDNA的合成 | 第37页 |
| 3.2.3 番茄ZF-HD转录因子家族成员的组织特异性分析 | 第37-38页 |
| 3.2.4 非生物胁迫条件下ZF-HD转录因子成员的表达模式分析 | 第38-41页 |
| 3.3 基因的沉默载体构建及遗传转化 | 第41-52页 |
| 3.3.1 克隆目的基因 | 第41-42页 |
| 3.3.2 提取质粒 | 第42页 |
| 3.3.3 质粒与目的片段的双酶切 | 第42-43页 |
| 3.3.4 重组质粒的连接与测序结果 | 第43-44页 |
| 3.3.5 农杆菌转化侵染番茄植株侵染效果 | 第44-45页 |
| 3.3.6 沉默效果的初步验证 | 第45-46页 |
| 3.3.7 沉默植株逆境胁迫表型观察 | 第46-47页 |
| 3.3.8 沉默番茄植株前后的表达量对比结果 | 第47-48页 |
| 3.3.9 SL-ZH13与SL-ZH22沉默前后非生物胁迫下的生理指标测定结果 | 第48-50页 |
| 3.3.10 活性氧测定结果 | 第50-52页 |
| 4 讨论 | 第52-55页 |
| 4.1 番茄ZF-HD家族的保守与多样性 | 第52-53页 |
| 4.2 番茄ZF-HD家族的组织特异性与差异表达分析 | 第53-54页 |
| 4.3 SL-ZH13与SL-ZH22基因沉默载体构建及抗逆功能验证 | 第54-55页 |
| 5 结论 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-64页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第64页 |
