摘要 | 第10-14页 |
ABSTRACT | 第14-18页 |
符号说明 | 第19-21页 |
绪论 | 第21-23页 |
文献综述 | 第23-55页 |
第一章 鸭病毒性肝炎的研究进展 | 第25-35页 |
1 DVH和DHAV-1 | 第25-28页 |
1.1 流行病学 | 第25-26页 |
1.2 病原学 | 第26页 |
1.3 临床特征 | 第26-27页 |
1.4 DHAV-1的分子生物学研究 | 第27页 |
1.5 致病机理 | 第27-28页 |
2 DVH的诊断 | 第28-29页 |
2.1 临床诊断 | 第28页 |
2.2 实验室诊断 | 第28-29页 |
3 防治策略 | 第29-31页 |
3.1 预防 | 第29-30页 |
3.2 治疗 | 第30-31页 |
参考文献 | 第31-35页 |
第二章 猪苓、黄芪、山豆根和黄芩的抗病毒作用研究进展 | 第35-48页 |
1 猪苓 | 第35-36页 |
1.1 猪苓多糖 | 第35-36页 |
1.2 其他活性成分 | 第36页 |
2 黄芪 | 第36-38页 |
2.1 黄芪多糖 | 第37页 |
2.2 黄芪皂苷 | 第37-38页 |
2.3 黄芪黄酮 | 第38页 |
3 山豆根 | 第38-39页 |
3.1 山豆根多糖 | 第38-39页 |
3.2 山豆根生物碱 | 第39页 |
4 黄芩 | 第39-42页 |
4.1 黄芩苷 | 第40页 |
4.2 黄芩素 | 第40-42页 |
参考文献 | 第42-48页 |
第三章 中药多糖与黄酮修饰的研究进展及本研究的目的意义 | 第48-55页 |
1 中药多糖 | 第48-50页 |
1.1 硫酸化 | 第48-49页 |
1.2 磷酸化 | 第49页 |
1.3 羧甲基化 | 第49-50页 |
1.4 其他修饰方法 | 第50页 |
2 中药黄酮 | 第50-51页 |
2.1 改善水溶性 | 第50页 |
2.2 改善油溶性 | 第50-51页 |
3 本研究的目的意义 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-55页 |
试验研究 | 第55-153页 |
第四章 四种中药成分及其衍生物对DEHs抗DHAV-1感染的影响 | 第57-76页 |
1 材料与方法 | 第57-61页 |
1.1 主要试剂及仪器 | 第57-58页 |
1.2 试验药物及病毒 | 第58页 |
1.3 PPS、APS和BSRPS的提取 | 第58-59页 |
1.4 PPS、APS、BSRPS和BA的修饰物制备及鉴定 | 第59-60页 |
1.5 DEHs的制备 | 第60页 |
1.6 药物在DEHs上最大安全浓度的测定 | 第60-61页 |
1.7 药物对DEHs抗DHAV-1感染的影响 | 第61页 |
1.8 数据分析 | 第61页 |
2 结果 | 第61-69页 |
2.1 各药物的红外结构分析 | 第61-64页 |
2.2 各药物在DEHs上的最大安全浓度 | 第64-67页 |
2.3 各药物对DEHs抗DHAV-1感染的影响 | 第67-68页 |
2.4 各药物的病毒抑制率 | 第68-69页 |
3 讨论 | 第69-70页 |
4 小结 | 第70-72页 |
参考文献 | 第72-76页 |
第五章 APS、sAPS、BSRPS、sBSRPS、BA和BAPC体外抗DHAV-1增殖作用 | 第76-87页 |
1 材料与方法 | 第76-79页 |
1.1 主要试剂及仪器 | 第76页 |
1.2 试验药物及病毒 | 第76-77页 |
1.3 DEHs单层的制备 | 第77页 |
1.4 药物对DHAV-1增殖途径的影响 | 第77-78页 |
1.5 Real-time PCR | 第78-79页 |
1.6 数据分析 | 第79页 |
2 结果 | 第79-82页 |
2.1 APS和sAPS抗DHAV-1在DEHs上增殖的作用 | 第79-80页 |
2.2 BSRPS和sBSRPS抗DHAV-1在DEHs上增殖的作用 | 第80-81页 |
2.3 BA和BAPC抗DHAV-1在DEHs上增殖的作用 | 第81-82页 |
3 讨论 | 第82-83页 |
4 小结 | 第83-84页 |
参考文献 | 第84-87页 |
第六章 APS、sAPS、BSRPS、sBSRPS、BA和BAPC对雏鸭抗DHAV-1感染的影响 | 第87-100页 |
1 材料与方法 | 第87-89页 |
1.1 主要试剂 | 第87-88页 |
1.2 试验动物 | 第88页 |
1.3 试验药物和病毒 | 第88页 |
1.4 动物分组与处理 | 第88页 |
1.5 样品采集及指标测定 | 第88-89页 |
1.6 数据分析 | 第89页 |
2 结果 | 第89-94页 |
2.1 APS和sAPS对雏鸭抗DHAV-1感染的影响 | 第89-91页 |
2.2 BSRPS和sBSRPS对雏鸭抗DHAV-1感染的影响 | 第91-92页 |
2.3 BA和BAPC对雏鸭抗DHAV-1感染的影响 | 第92-94页 |
3 讨论 | 第94-96页 |
4 小结 | 第96-98页 |
参考文献 | 第98-100页 |
第七章 APS、sAPS、BSRPS、sBSRPS、BA和BAPC对DHAV-1感染雏鸭氧化水平和免疫功能的影响 | 第100-112页 |
1 材料与方法 | 第100-102页 |
1.1 主要试剂 | 第100-101页 |
1.2 试验动物 | 第101页 |
1.3 试验药物和病毒 | 第101页 |
1.4 动物分组与处理 | 第101页 |
1.5 样品采集和指标测定 | 第101页 |
1.6 数据分析 | 第101-102页 |
2 结果 | 第102-106页 |
2.1 APS和sAPS体内抗氧化和增强免疫的作用 | 第102-103页 |
2.2 BSRPS和sBSRPS体内抗氧化和增强免疫的作用 | 第103-105页 |
2.3 BA和BAPC体内抗氧化和增强免疫的作用 | 第105-106页 |
3 讨论 | 第106-108页 |
4 小结 | 第108-109页 |
参考文献 | 第109-112页 |
第八章 干预试验验证BSRPS、sBSRPS、BA和BAPC的抗氧化和增强免疫作用 | 第112-131页 |
1 材料与方法 | 第112-114页 |
1.1 主要试剂 | 第112-113页 |
1.2 试验动物 | 第113页 |
1.3 试验药物和病毒 | 第113页 |
1.4 扁柏酚和FK506的剂量试验 | 第113页 |
1.5 动物分组与处理 | 第113-114页 |
1.6 样品采集和指标测定 | 第114页 |
1.7 数据分析 | 第114页 |
2 结果 | 第114-125页 |
2.1 扁柏酚和FK506的剂量筛选结果 | 第114-115页 |
2.2 BSRPS的干预试验 | 第115-118页 |
2.3 sBSRPS的干预试验 | 第118-120页 |
2.4 BA的干预试验 | 第120-123页 |
2.5 BAPC的干预试验 | 第123-125页 |
3 讨论 | 第125-127页 |
4 小结 | 第127-129页 |
参考文献 | 第129-131页 |
第九章 BSRPS、sBSRPS、BA和BAPC抑制DHAV-1基因合成的作用与机制 | 第131-145页 |
1 材料与方法 | 第131-135页 |
1.1 主要试剂 | 第131-132页 |
1.2 DEHs、病毒和试验药物 | 第132页 |
1.3 药物对DHAV-1基因合成的抑制作用 | 第132页 |
1.4 药物对3D蛋白稳定性的影响 | 第132-133页 |
1.5 药物对Hsp70蛋白表达的影响 | 第133-134页 |
1.6 数据分析 | 第134-135页 |
2 结果 | 第135-139页 |
2.1 药物对DHAV-1基因合成的影响 | 第135-136页 |
2.2 药物对3D蛋白稳定性的影响 | 第136-137页 |
2.3 药物对Hsp70表达的影响 | 第137-139页 |
3 讨论 | 第139-141页 |
4 小结 | 第141-142页 |
参考文献 | 第142-145页 |
第十章 BSRPS、sBSRPS、BA和BAPC抑制DHAV-1蛋白质翻译的作用与机制 | 第145-153页 |
1 材料与方法 | 第145-147页 |
1.1 主要试剂 | 第145-146页 |
1.2 DEHs、病毒和试验药物 | 第146页 |
1.3 药物对DHAV-1基因合成的抑制作用 | 第146页 |
1.4 药物对IRES活性的影响 | 第146-147页 |
1.5 数据分析 | 第147页 |
2 结果 | 第147-149页 |
2.1 药物对DHAV-1基因合成的抑制作用 | 第147-148页 |
2.2 药物对DHAV-1的IRES活性的影响 | 第148-149页 |
3 讨论 | 第149-150页 |
4 小结 | 第150-151页 |
参考文献 | 第151-153页 |
全文结论 | 第153-154页 |
论文创新点 | 第154-155页 |
攻读学位期间发表的论文 | 第155-157页 |
致谢 | 第157页 |