| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第1章 绪论 | 第12-32页 |
| 1.1 石油及重金属的污染现状 | 第12-16页 |
| 1.1.1 石油类HOCs物质的来源及其理化性质 | 第13-14页 |
| 1.1.2 重金属的来源及其理化性质 | 第14-15页 |
| 1.1.3 重金属与PAHs的复合污染现状 | 第15-16页 |
| 1.2 石油类有机污染物的生物修复 | 第16-19页 |
| 1.2.1 植物修复 | 第17-18页 |
| 1.2.2 动物修复 | 第18页 |
| 1.2.3 微生物修复 | 第18-19页 |
| 1.3 微生物对石油类HOCs物质的生物修复 | 第19-21页 |
| 1.3.1 微生物降解石油烃类的机理 | 第19-20页 |
| 1.3.2 降解石油烃类的微生物 | 第20-21页 |
| 1.4 微生物产生的生物表面活性剂 | 第21-23页 |
| 1.4.1 生物表面活性剂的特点 | 第22页 |
| 1.4.2 产生物表面活性剂的微生物及类型 | 第22页 |
| 1.4.3 生物表面活性剂的主要应用 | 第22-23页 |
| 1.5 真菌对石油重金属复合污染的生物修复 | 第23-29页 |
| 1.5.1 降解石油类HOCs物质的真菌及其生态学特征 | 第24-26页 |
| 1.5.2 真菌对复合污染物的生物吸附 | 第26-27页 |
| 1.5.3 真菌对复合污染物的生物降解 | 第27-28页 |
| 1.5.4 真菌-细菌优势菌群组合对PAHs的生物修复 | 第28-29页 |
| 1.6 论文的研究思路 | 第29-32页 |
| 1.6.1 研究目标 | 第29-30页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第30页 |
| 1.6.3 研究意义 | 第30-32页 |
| 第2章 高效石油降解真菌的筛选及鉴定 | 第32-42页 |
| 2.1 引言 | 第32页 |
| 2.2 实验材料 | 第32-34页 |
| 2.2.1 样品来源 | 第32页 |
| 2.2.2 仪器 | 第32-33页 |
| 2.2.3 主要试剂 | 第33-34页 |
| 2.2.4 主要培养基 | 第34页 |
| 2.3 实验方法 | 第34-36页 |
| 2.3.1 高效石油降解真菌的筛选 | 第34页 |
| 2.3.2 石油降解率 | 第34-35页 |
| 2.3.3 石油降解真菌的鉴定 | 第35-36页 |
| 2.4 实验结果 | 第36-42页 |
| 2.4.1 高效石油降解真菌的菌种筛选 | 第36-37页 |
| 2.4.2 石油降解的气质检测 | 第37-38页 |
| 2.4.3 形态学鉴定结果 | 第38-39页 |
| 2.4.4 分子鉴定结果 | 第39-40页 |
| 2.4.5 真菌鉴定结果 | 第40-42页 |
| 第3章 真菌以石油为碳源产生物表面活性剂的研究 | 第42-50页 |
| 3.1 前言 | 第42页 |
| 3.2 实验材料 | 第42-43页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第42页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第42-43页 |
| 3.3 实验方法 | 第43-44页 |
| 3.3.1 石油发酵液驱油功能检测 | 第43页 |
| 3.3.2 真菌乳化性能及菌丝体表面疏水性功能的检测 | 第43页 |
| 3.3.3 石油降解过程中表面张力的变化 | 第43页 |
| 3.3.4 脂肪酶活性的测定 | 第43-44页 |
| 3.3.5 表面活性剂分离萃取 | 第44页 |
| 3.3.6 表面活性剂鉴定 | 第44页 |
| 3.4 实验结果 | 第44-49页 |
| 3.4.1 排油圈大小的检测 | 第44页 |
| 3.4.2 表面张力和降解率的测定 | 第44-45页 |
| 3.4.3 脂肪酶活性的测定 | 第45-46页 |
| 3.4.4 乳化性能和疏水活性的检测 | 第46-47页 |
| 3.4.5 表面活性剂的提取鉴定 | 第47页 |
| 3.4.6 表面活性剂的红外鉴定 | 第47-49页 |
| 3.5 讨论 | 第49-50页 |
| 第4章 真菌对石油重金属复合污染的生物修复 | 第50-64页 |
| 4.1 前言 | 第50页 |
| 4.2 实验材料 | 第50-52页 |
| 4.2.1 实验菌株 | 第50-51页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第51页 |
| 4.2.3 主要试剂 | 第51-52页 |
| 4.3 实验方法 | 第52-54页 |
| 4.3.1 真菌对重金属耐受 | 第52页 |
| 4.3.2 真菌对PAHs的生物降解 | 第52-53页 |
| 4.3.3 硫酸铜的浓度对真菌吸附葸的影响 | 第53-54页 |
| 4.3.4 硫酸锰的浓度对真菌吸附蔥的影响 | 第54页 |
| 4.4 实验结果 | 第54-62页 |
| 4.4.1 重金属对真菌的影响 | 第54-57页 |
| 4.4.2 真菌对PAHs的生物降解 | 第57-58页 |
| 4.4.3 硫酸铜对真菌生物吸附和生物降解的影响 | 第58-59页 |
| 4.4.4 硫酸锰对真菌生物吸附和生物降解的影响 | 第59-62页 |
| 4.5 讨论 | 第62-64页 |
| 第5章 细菌真菌组合对多环芳烃的生物降解 | 第64-74页 |
| 5.1 前言 | 第64页 |
| 5.2 实验材料 | 第64-65页 |
| 5.2.1 菌株来源 | 第64-65页 |
| 5.2.2 仪器 | 第65页 |
| 5.2.3 主要试剂 | 第65页 |
| 5.2.4 主要培养基 | 第65页 |
| 5.3 实验方法 | 第65-66页 |
| 5.3.1 细菌及细菌-真菌组合对多环芳烃的降解 | 第65-66页 |
| 5.3.2 A.sp2和枝顶孢属真菌组合对葸的降解途径研究 | 第66页 |
| 5.4 实验结果 | 第66-72页 |
| 5.4.1 细菌及菌群组合对多环芳烃的降解 | 第67-68页 |
| 5.4.2 真菌-细菌菌群组合对多环芳烃的降解机制 | 第68-72页 |
| 5.5 讨论 | 第72-74页 |
| 第6章 实验结论与展望 | 第74-76页 |
| 6.1 实验结论 | 第74-75页 |
| 6.2 展望 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-86页 |
| 致谢 | 第86-88页 |
| 攻读硕士学位期间科研成果 | 第88页 |
