| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-14页 |
| 研究现状、成果 | 第11-13页 |
| 研究目的、方法 | 第13-14页 |
| 一、平行板流动室的建立和计算流体动力学分析 | 第14-40页 |
| 1.1 对象和方法 | 第15-16页 |
| 1.1.1 平行板流动室模型的建立材料 | 第15-16页 |
| 1.1.2 平行板流动室模型的建立方法 | 第16页 |
| 1.2 平行板流动室流场的计算流体动力学分析 | 第16-31页 |
| 1.2.1 平行板流动室的三维几何模型建立 | 第16-18页 |
| 1.2.2 定常流动条件下的模拟和验证 | 第18-29页 |
| 1.2.3 非定常流动条件下的模拟和分析 | 第29-31页 |
| 1.3 讨论 | 第31-38页 |
| 1.4 小结 | 第38-40页 |
| 二、生理状况下剪切力对内皮细胞表达MCP-1及其信号通路的影响 | 第40-71页 |
| 2.1 对象和方法 | 第40-50页 |
| 2.1.1 内皮细胞的培养 | 第40-42页 |
| 2.1.2 体外模拟层流剪切力和震荡剪切力 | 第42页 |
| 2.1.3 免疫荧光法 | 第42-43页 |
| 2.1.4 Western blotting检测方法 | 第43-50页 |
| 2.1.5 统计学分析 | 第50页 |
| 2.2 结果 | 第50-59页 |
| 2.2.1 生理状况下剪切力对内皮细胞MCP-1及其受体的影响 | 第50-53页 |
| 2.2.2 生理状况下剪切力对内皮细胞Cav-1表达的影响 | 第53-56页 |
| 2.2.3 生理状况下剪切力对内皮细胞ERK和NF-κB表达的的影响 | 第56-57页 |
| 2.2.4 生理状况下Cav-1对MCP-1表达的影响 | 第57-58页 |
| 2.2.5 生理状况下ERK抑制剂对MCP-1表达的影响 | 第58-59页 |
| 2.3 讨论 | 第59-69页 |
| 2.4 小结 | 第69-71页 |
| 三、尿毒症环境中剪切力对内皮细胞表达MCP-1及其信号通路的影响 | 第71-88页 |
| 3.1 对象和方法 | 第72-73页 |
| 3.1.1 模拟尿毒症环境 | 第72-73页 |
| 3.1.2 内皮细胞的培养 | 第73页 |
| 3.1.3 体外模拟层流剪切力和震荡剪切力 | 第73页 |
| 3.1.4 免疫荧光法 | 第73页 |
| 3.1.5 Westernblotting检测方法 | 第73页 |
| 3.1.6 统计学分析 | 第73页 |
| 3.2 结果 | 第73-78页 |
| 3.2.1 尿毒症环境中剪切力对内皮细胞MCP-1及其受体的影响 | 第73-75页 |
| 3.2.2 尿毒症环境中剪切力对内皮细胞Cav-1表达的影响 | 第75-77页 |
| 3.2.3 尿毒症环境中剪切力对内皮细胞ERK和NF-κB表达的影响 | 第77-78页 |
| 3.3 讨论 | 第78-87页 |
| 3.4 小结 | 第87-88页 |
| 全文结论 | 第88-89页 |
| 论文创新点 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-112页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第112-113页 |
| 综述 动静脉内瘘失败的分子机制 | 第113-134页 |
| 综述参考文献 | 第126-134页 |
| 致谢 | 第134-135页 |
| 个人简历 | 第135页 |
