摘要 | 第9-12页 |
ABSTRACT | 第12-15页 |
缩略词表 | 第16-18页 |
前言 | 第18-20页 |
第一章 文献综述 | 第20-36页 |
第一节 植物响应盐胁迫研究进展 | 第20-25页 |
1 盐胁迫的离子毒害与解毒机制 | 第20-22页 |
2 盐胁迫的氧化伤害与抗氧化机制 | 第22-23页 |
3 盐胁迫的光合抑制与抗性机制 | 第23-24页 |
4 盐胁迫的渗透伤害与抗性机制 | 第24-25页 |
第二节 多胺与盐胁迫 | 第25-32页 |
1 高等植物体内多胺的种类和形态 | 第25-26页 |
2 多胺的合成与分解 | 第26-27页 |
3 多胺代谢与多条代谢通路交联 | 第27-28页 |
4 多胺与盐胁迫耐性 | 第28-32页 |
4.1 多胺调控盐胁迫下的离子通道 | 第29-30页 |
4.2 多胺与ABA、ROS、NO交互作用 | 第30-32页 |
第三节 定量蛋白质组学及其在盐胁迫研究中的应用 | 第32-36页 |
1 定量蛋白质组学的研究技术 | 第32-34页 |
1.1 基于凝胶的蛋白质组学定量技术DIGE | 第32-33页 |
1.2 基于质谱的蛋白质组学定量技术iTRAQ | 第33-34页 |
2 定量蛋白质组学在盐胁迫中的应用 | 第34-36页 |
第二章 外源亚精胺对NaCl胁迫下黄瓜幼苗生长及Na~+和K~+分布的影响 | 第36-46页 |
1 材料与方法 | 第37页 |
1.1 材料与培养 | 第37页 |
1.2 试验处理 | 第37页 |
2 测定方法 | 第37-38页 |
2.1 鲜重和株高测定 | 第37-38页 |
2.2 Na~+、K~+含量测定 | 第38页 |
2.3 X-ray微区分析 | 第38页 |
2.4 数据分析 | 第38页 |
3 结果与分析 | 第38-42页 |
3.1 外源Spd对NaCl胁迫下黄瓜幼苗生长的影响 | 第38-40页 |
3.2 外源Spd对NaCl胁迫下黄瓜幼苗根系和叶片中Na~+、K~+含量的影响 | 第40-41页 |
3.3 根系和叶片横切面中Na~+、K~+含量的X-ray微区分析 | 第41-42页 |
4 讨论 | 第42-46页 |
第三章 外源亚精胺对NaCl胁迫下黄瓜幼苗多胺代谢的影响 | 第46-54页 |
1 材料和方法 | 第47页 |
1.1 材料与培养 | 第47页 |
1.2 试验处理 | 第47页 |
2 测定方法 | 第47-49页 |
2.1 多胺含量的测定 | 第47-48页 |
2.2 叶片及根系RNA提取与qRT-PCR | 第48页 |
2.3 数据分析 | 第48-49页 |
3 结果与分析 | 第49-51页 |
3.1 外源Spd对NaCl胁迫下黄瓜幼苗根系、叶片三种形态多胺的影响 | 第49-50页 |
3.2 外源Spd对NaCl胁迫下黄瓜幼苗根系、叶片多胺代谢酶基因表达的影响 | 第50-51页 |
4 讨论 | 第51-54页 |
第四章 外源亚精胺对NaCl胁迫下黄瓜幼苗叶片差异蛋白的影响 | 第54-68页 |
1 材料与方法 | 第55页 |
1.1 材料与培养 | 第55页 |
1.2 试验处理 | 第55页 |
2 测定方法 | 第55-56页 |
2.1 蛋白提取与iTRAQ标记 | 第55页 |
2.2 强阳离子交换色谱分离和LC-MS/MS分析 | 第55-56页 |
2.3 蛋白定性及定量 | 第56页 |
2.4 蛋白功能分类及聚类分析 | 第56页 |
3 结果与分析 | 第56-58页 |
3.1 差异蛋白响应模式 | 第56-57页 |
3.2 差异蛋白功能分类 | 第57-58页 |
4 讨论 | 第58-68页 |
4.1 光合相关蛋白 | 第58-61页 |
4.2 能量与物质代谢相关蛋白 | 第61-63页 |
4.3 活性氧清除系统相关蛋白 | 第63-64页 |
4.4 信号转导相关蛋白 | 第64-65页 |
4.5 蛋白合成、折叠、运输与降解相关蛋白 | 第65页 |
4.6 外源Spd缓解黄瓜幼苗叶片NaCl胁迫伤害的可能机制 | 第65-68页 |
第五章 外源亚精胺对NaCl胁迫下黄瓜幼苗叶片光合作用的影响 | 第68-76页 |
1 材料与方法 | 第69页 |
1.1 材料与培养 | 第69页 |
1.2 试验处理 | 第69页 |
2 测定方法 | 第69-71页 |
2.1 光合气体交换参数测定 | 第69页 |
2.2 叶绿素荧光参数测定 | 第69-70页 |
2.3 叶绿素含量测定 | 第70页 |
2.4 CO_2响应曲线(A/Ci) | 第70页 |
2.5 总RNA的提取与qRT-PCR | 第70-71页 |
2.6 数据分析 | 第71页 |
3 结果与分析 | 第71-73页 |
3.1 外源Spd对NaCl胁迫下黄瓜幼苗气体交换参数的影响 | 第71页 |
3.2 外源Spd对NaCl胁迫下黄瓜幼苗叶绿素含量、叶绿素荧光参数的影响 | 第71页 |
3.3 外源Spd对NaCl胁迫下黄瓜幼苗Rubisco羧化效率和光呼吸的影响 | 第71-73页 |
3.4 外源Spd对NaCl胁迫下黄瓜幼苗光合作用相关酶转录水平的影响 | 第73页 |
4 讨论 | 第73-76页 |
第六章 外源亚精胺对NaCl胁迫下黄瓜幼苗根系差异蛋白的影响 | 第76-84页 |
1 材料与方法 | 第76-77页 |
1.1 材料与培养 | 第76-77页 |
1.2 试验处理 | 第77页 |
2 测定方法 | 第77页 |
2.1 蛋白提取与iTRAQ标记 | 第77页 |
2.2 强阳离子交换色谱分离、LC-MS/MS分析及蛋白定性、定量 | 第77页 |
2.3 蛋白功能分类 | 第77页 |
3 结果与分析 | 第77-78页 |
3.1 差异蛋白响应模式 | 第77页 |
3.2 差异蛋白功能分类 | 第77-78页 |
4 讨论 | 第78-84页 |
4.1 能量代谢相关蛋白 | 第78-80页 |
4.2 物质代谢相关蛋白 | 第80-82页 |
4.3 胁迫防御相关蛋白 | 第82页 |
4.4 信号转导相关蛋白 | 第82-84页 |
第七章 外源亚精胺对NaCl胁迫下黄瓜幼苗根系糖酵解的影响 | 第84-90页 |
1 材料与方法 | 第84-85页 |
1.1 材料与培养 | 第84-85页 |
1.2 试验方法 | 第85页 |
2 测定方法 | 第85页 |
2.1 提取液的制备 | 第85页 |
2.2 糖酵解途径关键酶活性的测定 | 第85页 |
2.3 ENO蛋白提取和免疫印迹分析 | 第85页 |
3 结果与分析 | 第85-87页 |
3.1 外源Spd对NaCl胁迫下黄瓜幼苗根系糖酵解关键酶活性的影响 | 第85-87页 |
3.2 外源Spd对NaCl胁迫对黄瓜幼苗根系烯醇化酶蛋白表达的影响 | 第87页 |
4 讨论 | 第87-90页 |
第八章 外源亚精胺对NaCl胁迫下黄瓜结果期光合特性、产量和果实品质的影响 | 第90-98页 |
1 材料与方法 | 第91页 |
1.1 材料与培养 | 第91页 |
1.2 试验处理 | 第91页 |
2 测定方法 | 第91页 |
2.1 植株生物量和果实品质测定 | 第91页 |
2.2 光合气体交换参数测定 | 第91页 |
2.3 叶绿素荧光参数测定 | 第91页 |
3 结果与分析 | 第91-95页 |
3.1 外源Spd对NaCl胁迫下结果期黄瓜植株叶片光合气体交换参数的影响 | 第91-93页 |
3.2 外源Spd对NaCl胁迫下结果期黄瓜植株叶绿素荧光参数的影响 | 第93页 |
3.3 外源Spd对NaCl胁迫下结果期黄瓜植株生物量的影响 | 第93页 |
3.4 外源Spd对NaCl胁迫下结果期黄瓜植株产量的影响 | 第93-94页 |
3.5 外源Spd对NaCl胁迫下结果期黄瓜果实品质的影响 | 第94-95页 |
4 讨论 | 第95-98页 |
全文讨论 | 第98-102页 |
1 外源Spd缓解NaCl胁迫对黄瓜植株生长的抑制 | 第98页 |
2 外源Spd对NaCl胁迫下黄瓜幼苗叶片的生理及蛋白保护机制 | 第98-100页 |
3 外源Spd对NaCl胁迫下黄瓜幼苗根系的生理及蛋白保护机制 | 第100-101页 |
4 外源Spd对NaCl胁迫下黄瓜果实鲜重、品质及结果期光合特性的影响 | 第101-102页 |
全文结论 | 第102-104页 |
创新之处 | 第104-106页 |
参考文献 | 第106-126页 |
附表 | 第126-142页 |
附表1 外源Spd及NaCl处理黄瓜幼苗叶片差异表达蛋白 | 第126-135页 |
附表2 外源Spd及NaCl处理黄瓜幼苗根系差异表达蛋白 | 第135-142页 |
攻读博士期间发表论文 | 第142-144页 |
致谢 | 第144页 |