| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 1 前言 | 第10-12页 |
| 2 文献综述 | 第12-23页 |
| 2.1 针刺干预运动性骨骼肌损伤修复机制研究现状 | 第12-13页 |
| 2.1.1 针刺降钙效应 | 第12-13页 |
| 2.1.2 TRP通道与针刺降钙效应机制 | 第13页 |
| 2.2 针刺效应机制研究态势 | 第13-19页 |
| 2.2.1 针刺通过TRP通道诱发的活性氧信号与针刺效应机制的关系 | 第13-16页 |
| 2.2.2 针刺效应与线粒体网络稳态 | 第16-19页 |
| 2.3 研究假设 | 第19页 |
| 2.4 活体离子/分子检测技术的选择 | 第19-22页 |
| 2.4.1 大鼠骨骼肌样品制备的创新方法 | 第20-22页 |
| 2.6 研究方案 | 第22-23页 |
| 3 材料与方法 | 第23-35页 |
| 研究一 建立离心运动引起的骨骼肌损伤动物模型 | 第23-28页 |
| 3.1 实验对象及饲养条件 | 第23页 |
| 3.2 动物分组与实验方案 | 第23-24页 |
| 3.2.1 实验分组 | 第23页 |
| 3.2.2 实验方案 | 第23-24页 |
| 3.3 指标测试 | 第24-25页 |
| 3.4 仪器设备及实验试剂 | 第25页 |
| 3.4.1 主要仪器设备 | 第25页 |
| 3.4.2 试剂配比 | 第25页 |
| 3.5 数据处理 | 第25页 |
| 3.6 实验结果 | 第25-27页 |
| 3.7 小结 | 第27-28页 |
| 研究二 针刺干预离心运动对大鼠骨骼肌早期后续时相Ca~(2+)、Na~+、H_2O_2流速变化的研究 | 第28-35页 |
| 3.1 实验对象及饲养条件 | 第28页 |
| 3.2 动物分组与实验方案 | 第28-29页 |
| 3.2.1 实验分组 | 第28页 |
| 3.2.2 实验方案 | 第28-29页 |
| 3.3 标本处理方法与采集时间 | 第29-31页 |
| 3.3.1 标本处理方法 | 第29-30页 |
| 3.3.2 标本采集时间 | 第30-31页 |
| 3.4 指标检测与方法 | 第31-33页 |
| 3.4.1 采用非损伤微测技术检测Ca~(2+)、Na~+、H_2O_2动态流速变化 | 第31-33页 |
| 3.5 仪器设备及实验试剂 | 第33-34页 |
| 3.5.1 主要仪器设备 | 第33页 |
| 3.5.2 主要试剂 | 第33页 |
| 3.5.3 试剂配比 | 第33-34页 |
| 3.6 统计分析 | 第34-35页 |
| 4 实验结果 | 第35-44页 |
| 4.1 各组别Ca~(2+)在不同时相的动态流速变化 | 第35-38页 |
| 4.2 各组别Na~+在不同时相的动态流速变化 | 第38-41页 |
| 4.3 各组别H_2O_2在不同时相的动态流速变化 | 第41-44页 |
| 5 分析讨论 | 第44-48页 |
| 5.1 针刺干预骨骼肌损伤引起的Ca~(2+)、Na~+、H_2O_2动态流速变化 | 第44-45页 |
| 5.2 针刺引起Ca~(2+)、Na~+、H_2O_2动态流速变化的机制 | 第45-46页 |
| 5.3 TRP通道介导的NOX2活性氧信号与针刺效应机制 | 第46-48页 |
| 6 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-56页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
