| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 1 引言 | 第11-20页 |
| 1.1 向日葵黄萎病研究进展 | 第11-12页 |
| 1.1.1 向日葵的重要性 | 第11页 |
| 1.1.2 向日葵黄萎病及其发生危害 | 第11-12页 |
| 1.2 黄萎病生物防治的研究进展 | 第12-14页 |
| 1.2.1 影响微菌核的存活或萌发的能力 | 第12-13页 |
| 1.2.2 空间养分及侵染位点的竞争 | 第13-14页 |
| 1.3 诱导抗性的研究进展 | 第14-17页 |
| 1.3.1 物理诱导因子 | 第14页 |
| 1.3.2 化学诱导因子 | 第14-15页 |
| 1.3.3 生物诱导因子 | 第15-17页 |
| 1.4 RNA-seq的应用现状 | 第17-20页 |
| 1.4.1 转录组测序技术 | 第17-18页 |
| 1.4.2 应用转录组技术研究植物抗病机理的进展 | 第18-20页 |
| 2 向日葵弱毒黄萎病菌的筛选及其诱导条件优化研究 | 第20-32页 |
| 2.1 试验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 供试菌株来源 | 第20页 |
| 2.1.2 供试试剂及材料 | 第20页 |
| 2.1.3 向日葵品种 | 第20页 |
| 2.1.4 供试培养基 | 第20-21页 |
| 2.1.5 主要仪器设备 | 第21页 |
| 2.2 试验方法 | 第21-23页 |
| 2.2.1 病原菌的培养 | 第21页 |
| 2.2.2 孢子悬浮液的制备 | 第21页 |
| 2.2.3 向日葵种植 | 第21页 |
| 2.2.4 接种方法 | 第21页 |
| 2.2.5 黄萎病菌弱毒菌株的筛选方法 | 第21-22页 |
| 2.2.6 黄萎病菌弱毒菌株遗传稳定性试验 | 第22页 |
| 2.2.7 黄萎病菌弱毒菌株诱导间隔期的优化试验 | 第22页 |
| 2.2.8 黄萎病菌弱毒菌株诱导浓度的优化试验 | 第22页 |
| 2.2.9 最佳诱导效果的验证试验 | 第22页 |
| 2.2.10 弱毒菌株诱导对向日葵植株长势的影响测定 | 第22页 |
| 2.2.11 Vn-1诱导向日葵在大田中的防病效果 | 第22-23页 |
| 2.3 调查与数据处理方法 | 第23-24页 |
| 2.3.1 病情调查及防效计算 | 第23页 |
| 2.3.2 致萎调查及计算 | 第23-24页 |
| 2.4 结果与分析 | 第24-30页 |
| 2.4.1 黄萎病菌弱毒菌株筛选结果 | 第24-25页 |
| 2.4.2 黄萎病菌弱毒菌株Vn-1遗传稳定性的验证 | 第25-26页 |
| 2.4.3 诱导条件的优化 | 第26-27页 |
| 2.4.4 最佳优化条件下诱导向日葵抗黄萎病 | 第27-28页 |
| 2.4.5 弱毒菌株诱导对向日葵株高及根长的影响 | 第28-29页 |
| 2.4.6 Vn-1处理后向日葵在大田中的防病效果 | 第29-30页 |
| 2.5 小结与讨论 | 第30-32页 |
| 3 Vn-1诱导对向日葵的影响及其生理生化机制 | 第32-41页 |
| 3.1 试验材料 | 第32-33页 |
| 3.1.1 供试菌株 | 第32页 |
| 3.1.2 供试试剂及材料 | 第32-33页 |
| 3.1.3 向日葵品种 | 第33页 |
| 3.1.4 供试培养基 | 第33页 |
| 3.1.5 主要仪器设备 | 第33页 |
| 3.2 试验方法 | 第33-35页 |
| 3.2.0 病原菌的培养 | 第33页 |
| 3.2.1 病原菌的培养 | 第33页 |
| 3.2.2 孢子悬浮液的制备 | 第33页 |
| 3.2.3 向日葵种植 | 第33页 |
| 3.2.4 接种方法 | 第33-34页 |
| 3.2.5 抗性相关防御酶活性测定方法 | 第34-35页 |
| 3.2.6 Vn-1诱导向日葵细胞木质化的检测方法 | 第35页 |
| 3.2.7 Vn-1诱导向日葵叶片抗黄萎病菌的检测方法 | 第35页 |
| 3.2.8 Vn-1诱导向日葵胚根抗黄萎病菌的检测方法 | 第35页 |
| 3.3 结果与分析 | 第35-40页 |
| 3.3.1 Vn-1诱导对向日葵主要防御酶的影响 | 第35-38页 |
| 3.3.2 Vn-1诱导对向日葵叶片抗黄萎病菌的影响 | 第38-39页 |
| 3.3.3 Vn-1诱导对向日葵种子抗黄萎病菌的影响 | 第39页 |
| 3.3.4 Vn-1诱导对向日葵细胞木质化的影响 | 第39-40页 |
| 3.4 小结与讨论 | 第40-41页 |
| 4 向日葵受不同致病力黄萎病菌诱导后的转录组分析 | 第41-64页 |
| 4.1 试验材料 | 第41-42页 |
| 4.1.1 供试菌株 | 第41页 |
| 4.1.2 供试试剂及材料 | 第41页 |
| 4.1.3 向日葵品种 | 第41-42页 |
| 4.1.4 供试培养基 | 第42页 |
| 4.1.5 主要仪器设备 | 第42页 |
| 4.2 试验方法 | 第42-48页 |
| 4.2.1 病原菌的培养 | 第42页 |
| 4.2.2 孢子悬浮液的制备 | 第42页 |
| 4.2.3 向日葵种植 | 第42页 |
| 4.2.4 接种方法 | 第42页 |
| 4.2.5 转录组取样方法 | 第42-43页 |
| 4.2.6 RNA样品提取与纯化 | 第43-44页 |
| 4.2.7 Total RNA质量检测与定量 | 第44页 |
| 4.2.8 向日葵cDNA文库的构建及测序 | 第44-45页 |
| 4.2.9 RNA-seq原始序列数据获得 | 第45-46页 |
| 4.2.10 RNA-seq测序原始数据错误率检查 | 第46页 |
| 4.2.11 测序原始数据过滤 | 第46页 |
| 4.2.12 基因表达量统计 | 第46页 |
| 4.2.13 基于RNA-seq测序的整体质量评估 | 第46-47页 |
| 4.2.14 RNA-Seq相关性分析 | 第47页 |
| 4.2.15 差异表达基因分析 | 第47-48页 |
| 4.2.16 转录组成对比较筛选特异表达基因 | 第48页 |
| 4.2.17 差异表达基因GO分析 | 第48页 |
| 4.3 结果分析 | 第48-62页 |
| 4.3.1 Total RNA质量检测与定量 | 第48-49页 |
| 4.3.2 测序数据质量汇总 | 第49-51页 |
| 4.3.3 RNA-seq整体质量评估 | 第51-52页 |
| 4.3.4 基因表达水平分析 | 第52页 |
| 4.3.5 差异表达分析 | 第52-62页 |
| 4.4 小结与讨论 | 第62-64页 |
| 5 结论 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-74页 |
| 作者简介 | 第74页 |
