| 摘要 | 第8-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 中英文缩略词语对照表 | 第16-18页 |
| 前言 | 第18-21页 |
| 第一部分 彝医药治疗心痛的理论与文献研究 | 第21-24页 |
| 1 彝医药理论基础 | 第21页 |
| 2 彝医药“毒邪”致心痛理论 | 第21-22页 |
| 3 心痛治疗原则及方法 | 第22-23页 |
| 4 结论 | 第23-24页 |
| 第二部分 天麻通心脑方对心肌缺血再灌注损伤大鼠心电图ST段及心肌SOD水平的影响 | 第24-30页 |
| 1 实验目的 | 第24页 |
| 2 实验材料 | 第24-25页 |
| 2.1 实验动物 | 第24页 |
| 2.2 药品与试剂 | 第24页 |
| 2.3 实验仪器 | 第24-25页 |
| 3 实验方法 | 第25-28页 |
| 3.1 实验药物制备 | 第25页 |
| 3.2 分组及给药 | 第25-26页 |
| 3.3 造模方法 | 第26-27页 |
| 3.4 模型剔除标准 | 第27页 |
| 3.5 心电图监测 | 第27页 |
| 3.6 黄嘌呤氧化酶法检测心肌SOD活力 | 第27-28页 |
| 3.7 统计方法 | 第28页 |
| 4 实验结果 | 第28-29页 |
| 4.1 天麻通心脑方对MIRI大鼠心电图的影响 | 第28-29页 |
| 4.2 天麻通心脑方对MIRI大鼠心肌组织SOD的影响 | 第29页 |
| 5 实验小结 | 第29-30页 |
| 第三部分 天麻通心脑方对心肌缺血再灌注损伤大鼠Nrf2/ARE通路相关指标mRNA水平的影响 | 第30-44页 |
| 1 实验目的 | 第30页 |
| 2 实验材料 | 第30-31页 |
| 2.1 实验动物 | 第30页 |
| 2.2 主要药品与试剂 | 第30页 |
| 2.3 主要仪器设备及耗材 | 第30-31页 |
| 3 实验方法 | 第31-35页 |
| 3.1 实验药物制备 | 第31页 |
| 3.2 分组及给药 | 第31-32页 |
| 3.3 造模方法 | 第32页 |
| 3.4 实验步骤 | 第32-35页 |
| 3.4.1 细胞中总RNA提取 | 第32-33页 |
| 3.4.2 RNA逆转录(PrimeScript~(TM) RT reagent Kit with gDNA Eraser Takara RR047A) | 第33-35页 |
| 4 数据处理 | 第35-39页 |
| 4.1 对引物特异性进行检测 | 第35-37页 |
| 4.2 Real-time PCR的扩增曲线 | 第37-39页 |
| 5 统计方法 | 第39-42页 |
| 6 实验结果 | 第42页 |
| 7 实验小结 | 第42-44页 |
| 第四部分 天麻通心脑方对心肌缺血再灌注损伤大鼠Nrf2/ARE通路相关蛋白指标水平的影响 | 第44-56页 |
| 1 实验目的 | 第44页 |
| 2 实验材料 | 第44-46页 |
| 2.1 实验动物 | 第44页 |
| 2.2 主要药品与试剂 | 第44-45页 |
| 2.3 主要实验仪器及耗材 | 第45-46页 |
| 3 实验方法 | 第46-47页 |
| 3.1 实验药物制备 | 第46页 |
| 3.2 分组及给药 | 第46-47页 |
| 3.3 造模方法 | 第47页 |
| 3.4 实验步骤 | 第47页 |
| 3.4.1 按照说明配制相关的试剂和使用液 | 第47页 |
| 3.4.2 抗体稀释 | 第47页 |
| 4 实验方法 | 第47-50页 |
| 4.1 蛋白样品制备 | 第47页 |
| 4.2 蛋白浓度测定 | 第47-48页 |
| 4.3 SDS－PAGE电泳 | 第48-50页 |
| 5 实验结果 | 第50-54页 |
| 6 实验小结 | 第54-56页 |
| 讨论 | 第56-61页 |
| 1 评价方法 | 第56页 |
| 2 阳性药物的选择 | 第56-57页 |
| 3 机制探讨 | 第57-61页 |
| 不足 | 第61-62页 |
| 结论 | 第62-63页 |
| 创新点 | 第63-64页 |
| 展望 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-73页 |
| 文献综述 基于氧化应激的心肌缺血再灌注损伤研究进展 | 第73-85页 |
| 参考文献 | 第80-85页 |
| 论文发表情况 | 第85页 |
| 获奖情况 | 第85页 |
| 主持项目情况 | 第85页 |
| 专业证书通过情况 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86页 |
