| 缩略语表 | 第8-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 第一章 CCR5Δ32与3-4级aGVHD发生风险关系的Meta分析 | 第17-34页 |
| 1.1 前言 | 第17-19页 |
| 1.2 资料与方法 | 第19-22页 |
| 1.2.1 文献检索 | 第19页 |
| 1.2.2 纳入标准与排除标准 | 第19-20页 |
| 1.2.3 提取纳入文献的数据信息 | 第20页 |
| 1.2.4 纳入文献的质量评价 | 第20页 |
| 1.2.5 统计分析 | 第20-22页 |
| 1.3 研究结果 | 第22-30页 |
| 1.3.1 纳入文献的筛选 | 第22页 |
| 1.3.2 纳入文献的基本特征及质量评价 | 第22页 |
| 1.3.3 遗传关联性分析 | 第22-26页 |
| 1.3.4 马拉维若预防aGVHD的临床研究 | 第26页 |
| 1.3.5 受者携带CCR5Δ32突变和3-4级aGVHD发生风险的关系 | 第26-28页 |
| 1.3.6 供者携带CCR5Δ32突变和3-4级aGVHD发生风险的关系 | 第28-29页 |
| 1.3.7 发表偏倚 | 第29-30页 |
| 1.4 讨论 | 第30-34页 |
| 第二章 马拉维若对DC细胞成熟及分泌细胞因子的影响 | 第34-54页 |
| 2.1 前言 | 第34-37页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第37-39页 |
| 2.2.1 细胞来源 | 第37页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第37-38页 |
| 2.2.3 主要实验试剂 | 第38页 |
| 2.2.4 溶液的配制 | 第38-39页 |
| 2.3 实验方法 | 第39-42页 |
| 2.3.1 分离人外周血单个核细胞 | 第39页 |
| 2.3.2 单核细胞来源DC细胞的体外诱导及培养 | 第39-40页 |
| 2.3.3 马拉维若干预的实验设计及细胞分组 | 第40-41页 |
| 2.3.4 台盼蓝染色检测细细胞存活率 | 第41页 |
| 2.3.5 DC细胞表型流式分析 | 第41页 |
| 2.3.6 微量样本多重蛋白定量(cytometric bead array，CBA)检测成熟DC细胞分泌的细胞因子 | 第41-42页 |
| 2.3.7 统计学分析 | 第42页 |
| 2.4 实验结果 | 第42-52页 |
| 2.4.1 DC细胞形态学特征 | 第42-45页 |
| 2.4.2 单核细胞来源的未成熟DC细胞表面高表达CCR | 第45-46页 |
| 2.4.3 马拉维若预处理过的DC细胞表型流式分析 | 第46-47页 |
| 2.4.4 各组DC细胞培养上清液中细胞因子水平检测 | 第47-52页 |
| 2.5 讨论 | 第52-54页 |
| 第三章 马拉维若干预后的成熟DC细胞对T细胞增殖的影响 | 第54-66页 |
| 3.1 前言 | 第54页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第54-57页 |
| 3.2.1 细胞来源 | 第54-55页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第55页 |
| 3.2.3 主要实验试剂 | 第55-56页 |
| 3.2.4 溶液的配制 | 第56-57页 |
| 3.3 实验方法 | 第57-60页 |
| 3.3.1 分离人外周血单个核细胞 | 第57页 |
| 3.3.2 单核细胞来源DC细胞的体外诱导及培养 | 第57-58页 |
| 3.3.3 T细胞的分离纯化及培养 | 第58-59页 |
| 3.3.4 混合淋巴细胞实验 | 第59页 |
| 3.3.5 CellCoungtingKit-8(CCK-8)检测T细胞增殖 | 第59页 |
| 3.3.6 CBA检测DC细胞与T细胞混合培养后上清中的细胞因子 | 第59-60页 |
| 3.3.7 统计学分析 | 第60页 |
| 3.4 实验结果 | 第60-65页 |
| 3.4.1 T细胞的分离纯化及培养 | 第60-61页 |
| 3.4.2 马拉维若干预过的成熟DC细胞对T细胞增殖的影响 | 第61-62页 |
| 3.4.3 马拉维若处理过的DC细胞促进T细胞分泌IL- | 第62-65页 |
| 3.5 讨论 | 第65-66页 |
| 第四章 结论与展望 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 作者在学期间取得的学术成果 | 第75-76页 |
| 主要简历 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
