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光敏色素相互作用因子OsPIL14在水稻生长发育中的作用初探

摘要第3-5页
Abstract第5-6页
英文缩写符号及中英文对照表第10-12页
文献综述第12-23页
    1 光敏色素蛋白质的结构、特征及光感受特征第12-13页
    2 光敏色素在水稻生长发育中的功能第13-16页
        2.1 光敏色素在水稻苗期中的作用第13-14页
        2.2 光敏色素在水稻成熟期中的作用第14页
        2.3 光敏色素介导的水稻光周期开花及其在育性中的作用第14-15页
        2.4 光敏色素在水稻耐逆境胁迫中的作用第15-16页
    3 PIF转录因子的结构特征第16-17页
    4 PIF转录因子与光信号传导第17-20页
        4.1 光/暗条件下PIF基因的调节机制第18-20页
        4.2 拟南芥PIF基因功能第20页
    5 水稻PIF蛋白研究现状第20-21页
    6 研究意义第21-23页
第一部分 OsPIL14蛋白质的结构特征第23-34页
    1.1 实验材料第23-25页
        1.1.1 质粒和菌株第23页
        1.1.2 试剂及试剂盒第23页
        1.1.3 引物设计合成第23-24页
        1.1.4 培养基第24页
        1.1.5 主要仪器设备第24-25页
    1.2 实验方法第25-29页
        1.2.1 OsPIL14基因编码蛋白质的结构分析第25页
        1.2.2 OsPIL14蛋白质的亚细胞定位第25-28页
            1.2.2.1 OsPIL14-p EASY-Blunt3克隆载体构建第25-27页
            1.2.2.2 OsPIL14-p BI221-GFP载体构建第27-28页
            1.2.2.3 OsPIL14-p BI221-GFP质粒大量提取第28页
        1.2.3 酵母双杂交实验分析OsPIL14与phy A、phy B和phy C之间的相互作用第28-29页
            1.2.3.1 酵母感受态的制备第28-29页
            1.2.3.2 酵母转化第29页
    1.3 实验结果第29-34页
        1.3.1 OsPIL14基因编码蛋白质的结构特点第29-30页
        1.3.2 OsPIL14的亚细胞定位第30-31页
        1.3.3 利用酵母双杂交实验分析OsPIL14与Os PHYs的相互作用第31-32页
        1.3.4 讨论第32-34页
第二部分 OsPIL14基因的表达模式分析第34-44页
    2.1 实验材料第34-35页
        2.1.1 植物材料第34页
        2.1.2 试剂及试剂盒第34页
        2.1.3 引物设计合成第34-35页
        2.1.4 培养基第35页
        2.1.5 仪器设备第35页
    2.2 实验方法第35-38页
        2.2.1 OsPIL14组织表达特异性第35-38页
            2.2.1.1 水稻RNA的粗提第35-36页
            2.2.1.2 去除基因组DNA反应第36页
            2.2.1.3 反转录反应第36-37页
            2.2.1.4 荧光定量PCR检测第37-38页
        2.2.2 R对OsPIL14基因表达水平的影响第38页
        2.2.3 FR对OsPIL14基因表达水平的影响第38页
        2.2.4 比较R/FR处理不同时间后的OsPIL14基因表达模式第38页
    2.3 实验结果第38-43页
        2.3.1 OsPIL14基因的组织表达特异性第38-39页
        2.3.2 红光和远红光对OsPIL14基因表达水平的影响第39-41页
        2.3.3 光敏色素介导的远红光对OsPIL14基因表达的影响第41-42页
        2.3.4 不同光照长度的R和FR对OsPIL14基因表达的影响第42-43页
    2.4 讨论第43-44页
第三部分 OsPIL14基因在水稻生长发育中的作用第44-68页
    3.1 植物材料第44页
    3.2 试剂及试剂盒第44页
    3.3 引物设计合成第44-45页
    3.4 仪器设备第45页
    3.5 实验方法第45-50页
        3.5.1 In-Fusion法构建植物过表达载体第45-46页
        3.5.2 带有标签过表达载体的构建及转基因植株的转化第46-47页
        3.5.3 OsPIL14基因过表达转基因水稻植株的鉴定第47-48页
        3.5.4 利用Southern blot实验检测OsPIL14转基因水稻外源基因插入位点第48页
        3.5.5 OsPIL14转基因表达水平检测第48页
        3.5.6 培育OsPIL14-CRISPR功能缺失突变体转基因植株第48页
        3.5.7 暗生长条件下,OsPIL14转基因株系的幼苗表型第48-49页
        3.5.8 R和FR对OsPIL14-OX株系幼苗表型的影响第49页
        3.5.9 OsPIL14转基因株系大田农艺性状调查第49页
        3.5.10 OsPIL14转基因水稻株系籽粒粒型分析第49-50页
        3.5.11 OsPIL14-CRISPR转基因水稻株系耐盐性分析第50页
    3.6 实验结果第50-68页
        3.6.1 OsPIL14基因过表达转基因植株的培育及鉴定第50-51页
        3.6.2 OsPIL14转基因水稻外源基因插入位点检测及表达水平检测第51-52页
        3.6.3 OsPIL14 CRISPR/Cas9转基因水稻的培育第52-53页
        3.6.4 转基因水稻的光形态建成特征及暗形态建成特征第53-57页
            3.6.4.1 转基因水稻的暗形态建成第53-54页
            3.6.4.2 红光和远红光对OsPIL14转基因水稻幼苗的影响第54-57页
        3.6.5 OsPIL14转基因株系的田间表型分析第57-59页
            3.6.5.1 OsPIL14-CRISPR株系的大田农艺性状分析第58-59页
        3.6.6 OsPIL14-CRISPR株系穗建成分析第59-60页
        3.6.7 OsPIL14转基因株系籽粒粒型分析第60-62页
        3.6.8 OsPIL14转基因株系耐盐性分析第62-64页
        3.6.9 讨论第64-68页
            3.6.9.1 黑暗条件下OsPIL14基因可影响中胚轴及胚芽鞘生长第64-65页
            3.6.9.2 OsPIL14基因参与R和FR介导的光形态建成途径第65页
            3.6.9.3 OsPIL14基因对水稻生长发育各阶段的作用第65-66页
            3.6.9.4 OsPIL14基因影响水稻盐胁迫耐性第66-68页
结论第68-69页
参考文献第69-76页
致谢第76-77页
附录第77-83页

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