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蚯蚓纤溶蛋白的分离纯化及其对MCF-7细胞生长、粘附影响的研究

摘要第13-15页
ABSTRACT第15-17页
缩略词(Abbreviation)第18-19页
第一章 绪论第19-33页
    1.1 蚯蚓及其主要活性成分简介第19-23页
        1.1.1 蚯蚓纤溶酶(Earthworm Fibrinolytic Enzyme,EFE)第20-21页
        1.1.2 蚯蚓抗菌活性蛋白以及抗菌多肽第21-22页
        1.1.3 蚯蚓体内其它活性成分简介第22-23页
    1.2 乳腺癌及MCF-7细胞株第23-24页
    1.3 粘附因子与肿瘤细胞侵袭转移的关系第24-29页
        1.3.1 细胞粘附因子的类别及作用第25页
        1.3.2 整合素(IF)家族简介及其与肿瘤转移的关系第25-27页
        1.3.3 选择素家族简介及其与肿瘤转移的关系第27页
        1.3.4 钙粘素超家族简介及其与肿瘤转移的关系第27-28页
        1.3.5 免疫球蛋白超家族简介及其与肿瘤转移的关系第28页
        1.3.6 CD44家族简介及其与肿瘤转移的关系第28-29页
    1.4 紫杉醇研究背景第29-30页
        1.4.1 紫杉醇的抗癌作用机制及在临床上的应用第29-30页
        1.4.2 紫杉醇在治疗癌症方面的缺陷第30页
    1.5 蚯蚓抗肿瘤作用的研究背景第30-31页
    1.6 课题研究内容及意义第31-33页
第二章 蚯蚓抗肿瘤活性蛋白的提取、分离、纯化及性质检测第33-57页
    2.1 实验所用材料及试剂第33-38页
        2.1.1 实验材料第33页
        2.1.2 实验仪器和设备第33-34页
        2.1.3 主要试剂及配制方法第34-38页
            2.1.3.1 主要试剂第34-35页
            2.1.3.2 溶液的配制方法第35-38页
    2.2 实验方法第38-45页
        2.2.1 MCF-7细胞的传代、培养第38页
        2.2.2 蚯蚓水总提物的制备及抗肿瘤活性检测第38-39页
        2.2.3 蚯蚓水总提物的分级盐析及透析脱盐第39页
        2.2.4 蚯蚓各级盐析蛋白抗肿瘤活性的检测第39-40页
        2.2.5 DEAE阴离子交换层析及各组分活性筛选第40-41页
        2.2.6 S200凝胶层析第41-42页
        2.2.7 G10凝胶层析除杂及抗肿瘤活性检测第42-43页
        2.2.8 蚯蚓抗肿瘤活性蛋白的SDS-PAGE电泳分析第43-44页
        2.2.9 TSKgel G2000SWXL凝胶色谱分析第44页
        2.2.10 纤维蛋白平板实验第44-45页
        2.2.11 抗肿瘤活性蛋白EFP的鉴定与分析第45页
    2.3 实验结果第45-55页
        2.3.1 蚯蚓水总提物的抗肿瘤活性检测结果第45-46页
        2.3.2 各级盐析蛋白对MCF-7细胞生长的作用的比较第46-47页
        2.3.3 DEAE阴离子交换层析及各组分活性筛选第47-50页
            2.3.3.1 DEAE阴离子交换层析预实验分离结果第47页
            2.3.3.2 DEAE阴离子交换预实验柱分离得到的各蛋白组峰的抑瘤活性检测第47-49页
            2.3.3.3 DEAE阴离子交换层析柱分离结果第49页
            2.3.3.4 DEAE阴离子交换层析柱分离得到的各蛋白峰抑瘤活性检测第49-50页
        2.3.4 S200凝胶层析第50-51页
        2.3.5 过S200凝胶层析后各峰活性检测结果第51-52页
        2.3.6 G10凝胶脱盐第52页
        2.3.7 D5-S2号峰经G10脱盐后抑瘤活性检测结果第52-53页
        2.3.8 TSKgel G2000SWXL凝胶分析结果第53页
        2.3.9 D5-S2蛋白的电泳分析结果第53-54页
        2.3.10 D5-S2蛋白的纤溶活性测定结果第54-55页
        2.3.11 EFP的分析与鉴定结果第55页
    2.4 结果讨论及本章小结第55-57页
第三章 EFP对MCF-7细胞的生长、迁移、粘附的影响第57-73页
    3.1 实验所用材料及试剂第57-61页
        3.1.1 实验材料第57页
        3.1.2 实验仪器和设备第57-58页
        3.1.3 主要试剂及配制方法第58-61页
            3.1.3.1 主要试剂第58页
            3.1.3.2 溶液的配制方法第58-61页
    3.2 实验方法第61-67页
        3.2.1 EFP对MCF-7细胞生长、形态的影响第61-62页
        3.2.2 EFP对MCF-7细胞迁移作用的影响第62页
        3.2.3 RT-PCR法检测EFP对MCF-7细胞中粘附因子CD44v6在mRNA水平表达的影响第62-65页
        3.2.4 RT-PCR法检测EFP对MCF-7细胞中粘附因子FAK在mRNA水平表达的影响第65页
        3.2.5 Western Blot检测EFP作用后MCF-7细胞内FAK蛋白的表达变化第65-67页
    3.3 实验结果第67-71页
        3.3.1 EFP对MCF-7细胞生长、形态的影响第67-68页
            3.3.1.1 EFP对MCF-7细胞生长抑制作用的检测结果第67-68页
            3.3.1.2 EFP作用后MCF-7细胞形态的变化第68页
        3.3.2 EFP对MCF-7细胞迁移作用的影响—划痕结果第68-69页
        3.3.3 RT-PCR检测结果第69-70页
        3.3.4 Western Blot检测结果第70-71页
    3.4 结果讨论及本章小结第71-73页
第四章 EFP与紫杉醇联用后对MCF-7细胞生长抑制作用的变化第73-79页
    4.1 实验所用材料及试剂第73-75页
        4.1.1 实验材料第73页
        4.1.2 实验仪器和设备第73-74页
        4.1.3 主要试剂及配制方法第74-75页
            4.1.3.1 主要试剂第74页
            4.1.3.2 溶液的配制方法第74-75页
    4.2 实验方法第75-76页
        4.2.1 EFP与紫杉醇联合应用后对MCF-7细胞存活率的影响第75页
        4.2.2 免疫荧光法检测EFP与紫杉醇联合应用后β-tublin的变化第75-76页
    4.3 实验结果第76-78页
        4.3.1 EFP与紫杉醇联合应用后对MCF-7细胞存活率的影响结果第76-77页
        4.3.2 EFP与紫杉醇联合应用时对β-tublin的影响变化第77-78页
    4.4 结果讨论及本章小结第78-79页
论文小结第79-81页
参考文献第81-88页
致谢第88-89页
攻读学位期间发表的论文第89-90页
学位论文评阅及答辩情况表第90页

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