| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-30页 |
| 1.1 引言 | 第12页 |
| 1.2 二氧化锰概述 | 第12页 |
| 1.3 二氧化锰的制备 | 第12-14页 |
| 1.3.1 二氧化锰的制备方法 | 第12-14页 |
| 1.4 二氧化锰在传感中的应用 | 第14-21页 |
| 1.4.1 利用二氧化锰与单链核酸、双链核酸结合能力检测 | 第14-17页 |
| 1.4.2 利用二氧化锰氧化还原性检测 | 第17-21页 |
| 1.5 介孔二氧化硅概述 | 第21页 |
| 1.6 介孔二氧化硅的制备 | 第21-22页 |
| 1.6.1 水热法合成介孔二氧化硅 | 第21页 |
| 1.6.2 溶胶-凝胶法合成介孔二氧化硅 | 第21-22页 |
| 1.7 介孔二氧化硅在生物医学中的应用 | 第22-28页 |
| 1.7.1 介孔二氧化硅药物载体 | 第22-28页 |
| 1.8 本文拟开展的工作 | 第28-30页 |
| 第二章 二氧化锰微球作为传感平台检测病毒核酸的研究 | 第30-42页 |
| 2.1 引言 | 第30-31页 |
| 2.2 实验部分 | 第31-33页 |
| 2.2.1 材料和仪器 | 第31-32页 |
| 2.2.2 二氧化锰微球的制备 | 第32页 |
| 2.2.3 二氧化锰纳米片的制备 | 第32页 |
| 2.2.4 紫外吸收及荧光分析 | 第32-33页 |
| 2.3 结果讨论 | 第33-41页 |
| 2.3.1 MnO_2微球及纳米片的合成及表征 | 第33-35页 |
| 2.3.2 MnO_2纳米片及MnO_2微球对三种链长核酸探针的荧光抑制作用 | 第35-36页 |
| 2.3.3 用MnO_2微球筛选出最适链长的核酸探针并检测MO核酸 | 第36-39页 |
| 2.3.4 选择性实验 | 第39页 |
| 2.3.5 重复性及可行性实验 | 第39-41页 |
| 2.4 小结 | 第41-42页 |
| 第三章 生物可降解的介孔二氧化硅药物递送载体的构建 | 第42-54页 |
| 3.1 引言 | 第42-43页 |
| 3.2 实验部分 | 第43-46页 |
| 3.2.1 材料和仪器 | 第43-44页 |
| 3.2.2 mSiO_2(s-s)纳米粒子及mSiO_2(s-s)-NH_2纳米粒子的合成 | 第44页 |
| 3.2.3 DOX封装,BSA-FA修饰及DOX释放研究 | 第44-45页 |
| 3.2.4 在还原溶液中mSiO_2(s-s)降解性能测试 | 第45页 |
| 3.2.5 细胞存活率和荧光共聚焦成像测试 | 第45-46页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第46-52页 |
| 3.3.1 mSiO_2(s-s)纳米粒子的制备与表征 | 第46-49页 |
| 3.3.2 降解性及药物释放研究 | 第49-50页 |
| 3.3.3 MTT实验及细胞荧光共聚焦成像研究 | 第50-52页 |
| 3.4 小结 | 第52-54页 |
| 第四章 硫化氢荧光探针的合成及应用 | 第54-62页 |
| 4.1 前言 | 第54-55页 |
| 4.2 实验部分 | 第55页 |
| 4.2.1 材料 | 第55页 |
| 4.2.3 BTN及BNH的合成流程 | 第55页 |
| 4.3 结果讨论 | 第55-61页 |
| 4.3.1 BTN与H_2S的反应动力学分析 | 第55-56页 |
| 4.3.2 pH的影响及滴定实验 | 第56页 |
| 4.3.3 选择性实验及反应机理 | 第56-58页 |
| 4.3.4 密度泛函数理论(DFT)计算研究探针荧光恢复机理 | 第58-59页 |
| 4.3.5 红酒样品中检测H_2S | 第59-60页 |
| 4.3.6 试纸条测试红酒样品中H_2S | 第60-61页 |
| 4.4 小结 | 第61-62页 |
| 第五章 结论 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-76页 |
| 附录 | 第76-80页 |
| 致谢 | 第80-82页 |
| 作者简介 | 第82页 |
