| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-29页 |
| 1.1 昆虫的化学感受系统 | 第13页 |
| 1.2 化学感受蛋白的研究进展 | 第13-21页 |
| 1.2.1 化学感受蛋白的表达分布 | 第13-14页 |
| 1.2.2 化学感受蛋白的结构特点 | 第14-16页 |
| 1.2.3 化学感受蛋白的功能 | 第16-21页 |
| 1.2.4 化学感受蛋白的技术应用 | 第21页 |
| 1.3 味觉受体的研究进展 | 第21-25页 |
| 1.3.1 味觉受体的特征 | 第21-22页 |
| 1.3.2 味觉受体的表达 | 第22页 |
| 1.3.3 味觉受体的功能 | 第22-25页 |
| 1.4 小蠹虫研究进展 | 第25-27页 |
| 1.4.1 小蠹虫化学感受机制研究进展 | 第25-26页 |
| 1.4.2 华山松大小蠹研究进展 | 第26-27页 |
| 1.5 研究目的意义与研究内容 | 第27-29页 |
| 1.5.1 研究目的意义 | 第27页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第27-28页 |
| 1.5.3 技术路线 | 第28-29页 |
| 第二章 华山松大小蠹CSPs基因的克隆与序列分析 | 第29-46页 |
| 2.1 材料与方法 | 第29-37页 |
| 2.1.1 供试昆虫 | 第29页 |
| 2.1.2 主要试剂(盒)与仪器 | 第29-30页 |
| 2.1.3 华山松大小蠹CSPs基因的克隆 | 第30-36页 |
| 2.1.4 华山松大小蠹CSPs基因全长序列获取 | 第36-37页 |
| 2.1.5 华山松大小蠹CSPs基因的序列分析 | 第37页 |
| 2.2 结果与分析 | 第37-44页 |
| 2.2.1 华山松大小蠹CSPs基因克隆及序列分析 | 第37-44页 |
| 2.3 讨论与小结 | 第44-46页 |
| 2.3.1 讨论 | 第44-45页 |
| 2.3.2 小结 | 第45-46页 |
| 第三章 华山松大小蠹CSPs基因的表达谱分析及诱导表达 | 第46-58页 |
| 3.1 材料与方法 | 第46-50页 |
| 3.1.1 供试昆虫 | 第46页 |
| 3.1.2 主要的试剂(盒)与仪器 | 第46-47页 |
| 3.1.3 华山松大小蠹CSPs基因定量引物的设计与筛选 | 第47-48页 |
| 3.1.4 华山松大小蠹不同发育阶段CSPs基因表达水平 | 第48-49页 |
| 3.1.5 华山松大小蠹迁飞成虫不同组织CSPs基因分布 | 第49-50页 |
| 3.1.6 华山松大小蠹CSPs基因的饥饿与取食诱导表达 | 第50页 |
| 3.2 结果与分析 | 第50-56页 |
| 3.2.1 华山松大小蠹化CSPs在不同发育阶段的表达差异 | 第50-53页 |
| 3.2.2 华山松大小蠹CSPs基因在不同组织的分布与表达差异 | 第53页 |
| 3.2.3 饥饿与取食处理对华山松大小蠹CSPs基因表达水平的影响 | 第53-56页 |
| 3.3 讨论与小结 | 第56-58页 |
| 3.3.1 讨论 | 第56-57页 |
| 3.3.2 小结 | 第57-58页 |
| 第四章 华山松大小蠹CSPs的表达纯化及其结合特性 | 第58-75页 |
| 4.1 材料与方法 | 第58-66页 |
| 4.1.1 供试昆虫 | 第58页 |
| 4.1.2 主要的试剂(盒)与仪器 | 第58-60页 |
| 4.1.3 华山松大小蠹CSPs原核表达载体的构建 | 第60-63页 |
| 4.1.4 蛋白纯化和浓度测定 | 第63-65页 |
| 4.1.5 华山松大小蠹CSPs结合特征的研究 | 第65-66页 |
| 4.1.6 DarmCSP2的三维结构模型 | 第66页 |
| 4.2 结果与分析 | 第66-72页 |
| 4.2.1 华山松大小蠹CSPs的诱导表达、纯化和浓度测定 | 第66-68页 |
| 4.2.2 华山松大小蠹CSPs与1-NPN结合常数 | 第68-69页 |
| 4.2.3 华山松大小蠹CSPs与气味配体的竞争结合 | 第69-71页 |
| 4.2.4 DarmCSP2的结构模型 | 第71-72页 |
| 4.3 讨论与小结 | 第72-75页 |
| 4.3.1 讨论 | 第72-73页 |
| 4.3.2 小结 | 第73-75页 |
| 第五章 华山松大小蠹CSPs基因的RNA干扰 | 第75-82页 |
| 5.1 材料与方法 | 第75-78页 |
| 5.1.1 供试昆虫 | 第75页 |
| 5.1.2 主要的试剂(盒)与仪器 | 第75-76页 |
| 5.1.3 dsRNA的合成和注射 | 第76-78页 |
| 5.1.4 实时荧光定量检测 | 第78页 |
| 5.1.5 EAG检测 | 第78页 |
| 5.2 结果与分析 | 第78-80页 |
| 5.2.1 实时荧光定量检测注射dsCSP2对DarmCSP2干扰的效果 | 第78-79页 |
| 5.2.2 EAG检测RNA干扰的效果 | 第79-80页 |
| 5.3 讨论与小结 | 第80-82页 |
| 5.3.1 讨论 | 第80-81页 |
| 5.3.2 小结 | 第81-82页 |
| 第六章 华山松大小蠹GR基因的克隆及表达谱分析 | 第82-90页 |
| 6.1 材料与方法 | 第82-84页 |
| 6.1.1 供试昆虫 | 第82页 |
| 6.1.2 主要的试剂(盒)与仪器 | 第82页 |
| 6.1.3 华山松大小蠹GR基因的克隆 | 第82-83页 |
| 6.1.4 华山松大小蠹GR基因全长序列获取 | 第83页 |
| 6.1.5 华山松大小蠹GR基因的序列分析和系统发育树的构建 | 第83-84页 |
| 6.1.6 华山松大小蠹GR3基因在不同发育阶段和迁飞成虫不同组织中表达差异 | 第84页 |
| 6.1.7 华山松大小蠹GR3基因饥饿和取食处理诱导表达 | 第84页 |
| 6.2 结果与分析 | 第84-89页 |
| 6.2.1 华山松大小蠹GR基因的序列分析 | 第84-87页 |
| 6.2.2 不同发育阶段和迁飞成虫不同组织中DarmGR3基因的转录水平差异 | 第87-88页 |
| 6.2.3 饥饿与取食处理对华山松大小蠹GR3基因表达水平的影响 | 第88-89页 |
| 6.3 讨论与小结 | 第89-90页 |
| 6.3.1 讨论 | 第89页 |
| 6.3.2 小结 | 第89-90页 |
| 第七章 结论与展望 | 第90-92页 |
| 7.1 结论 | 第90-91页 |
| 7.2 创新 | 第91页 |
| 7.3 展望 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-107页 |
| 略缩词 | 第107-108页 |
| 致谢 | 第108-109页 |
| 作者简介 | 第109页 |
