摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-10页 |
文献综述部分 | 第14-37页 |
第一章 影响体细胞核移植效率的因素 | 第14-21页 |
1.1 克隆简史 | 第14-15页 |
1.2 影响体细胞核移植效率的因素 | 第15-21页 |
1.2.1 供体细胞的来源和状态 | 第16页 |
1.2.2 卵母细胞的来源和质量 | 第16-18页 |
1.2.3 显微操作方法和激活方法 | 第18-19页 |
1.2.4 胚胎培养 | 第19-21页 |
第二章 哺乳动物的表观遗传学研究 | 第21-37页 |
2.1 表观遗传机制 | 第21-33页 |
2.1.1 DNA 甲基化 | 第21-23页 |
2.1.2 组蛋白修饰 | 第23-32页 |
2.1.3 基因组印记 | 第32页 |
2.1.4 X 染色体失活 | 第32-33页 |
2.2 受精过程中的表观遗传重编程 | 第33页 |
2.3 体细胞核移植过程中的表观遗传重编程 | 第33-37页 |
2.3.1 早期形态学变化 | 第33-34页 |
2.3.2 染色体蛋白质的变化 | 第34-37页 |
实验部分 | 第37-90页 |
第三章 牛卵母细胞成熟和胚胎早期发育过程中表观遗传修饰的研究 | 第37-50页 |
3.1 材料和方法 | 第37-41页 |
3.1.1 实验材料 | 第37页 |
3.1.2 试剂与仪器 | 第37-39页 |
3.1.3 实验方法 | 第39-41页 |
3.1.4 实验数据的统计分析 | 第41页 |
3.2 结果与分析 | 第41-47页 |
3.2.1 卵母细胞体外成熟过程中表观遗传修饰的变化 | 第42页 |
3.2.2 牛体外受精胚胎和核移植胚胎早期发育过程中 DNA 甲基化的变化 | 第42页 |
3.2.3 牛体外受精胚胎和核移植胚胎早期发育过程中组蛋白乙酰化的变化 | 第42-47页 |
3.2.4 牛体外受精胚胎和核移植胚胎早期发育过程中组蛋白甲基化的变化 | 第47页 |
3.3 讨论 | 第47-49页 |
3.4 小结 | 第49-50页 |
第四章 组蛋白去乙酰化酶抑制剂对体细胞核移植胚胎体外发育及表观遗传修饰的影响 | 第50-68页 |
4.1 材料和方法 | 第50-53页 |
4.1.1 实验材料 | 第50-51页 |
4.1.2 试剂与仪器 | 第51页 |
4.1.3 实验方法 | 第51-52页 |
4.1.4 实验设计和数据分析 | 第52-53页 |
4.2 结果与分析 | 第53-62页 |
4.2.1 TSA 和 Scriptaid 处理对体细胞的影响 | 第53-57页 |
4.2.2 TSA 和 Scriptaid 处理供体细胞对体细胞核移植胚胎早期发育的影响 | 第57-59页 |
4.2.3 TSA 和 Scriptaid 处理重构胚对体细胞核移植胚胎早期发育的影响 | 第59-60页 |
4.2.4 TSA 和 Scriptaid 处理重构胚对体细胞核移植胚胎表观遗传重编程的影响 | 第60-62页 |
4.3 讨论 | 第62-67页 |
4.4 小结 | 第67-68页 |
第五章 牛卵母细胞 Cell-Free 体系的建立 | 第68-77页 |
5.1 材料和方法 | 第68-73页 |
5.1.1 实验材料 | 第68-69页 |
5.1.2 试剂与仪器 | 第69-70页 |
5.1.3 实验方法 | 第70-72页 |
5.1.4 数据分析 | 第72-73页 |
5.2 结果与分析 | 第73-75页 |
5.2.1 卵母细胞提取物蛋白完整性和活性检测 | 第73页 |
5.2.2 卵母细胞提取物处理后体细胞核的变化 | 第73-75页 |
5.2.3 卵母细胞提取物处理后的体细胞再培养 | 第75页 |
5.3 讨论 | 第75-76页 |
5.4 小结 | 第76-77页 |
第六章 利用牛卵母细胞 Cell-Free 体系筛选体细胞重编程因子 | 第77-90页 |
6.1 材料和方法 | 第77-81页 |
6.1.1 实验材料 | 第77页 |
6.1.2 试剂与仪器 | 第77-79页 |
6.1.3 实验方法 | 第79-81页 |
6.2 结果与分析 | 第81-85页 |
6.2.1 双向电泳和质谱分析结果 | 第81-83页 |
6.2.2 目标蛋白可能的蛋白相互作用网络分析 | 第83-85页 |
6.3 讨论 | 第85-89页 |
6.4 小结 | 第89-90页 |
全文结论 | 第90-91页 |
创新之处和进一步研究的课题 | 第91-92页 |
参考文献 | 第92-110页 |
致谢 | 第110-111页 |
作者简介 | 第111页 |
近年发表的文章 | 第111页 |