| 中文摘要 | 第6-8页 |
| 英文摘要 | 第8-9页 |
| 第一章 茋类化合物研究进展 | 第10-21页 |
| 1 茋类化合物的分类 | 第10-11页 |
| 2 药理作用 | 第11-14页 |
| 2.1 心血管保护 | 第11页 |
| 2.2 降血脂 | 第11-12页 |
| 2.3 抗炎作用 | 第12页 |
| 2.4 抗肿瘤作用 | 第12-13页 |
| 2.5 抗微生物作用 | 第13-14页 |
| 2.6 其他药理作用 | 第14页 |
| 3 药代动力学研究 | 第14-20页 |
| 3.1 白藜芦醇的药代动力学特征 | 第14-15页 |
| 3.2 白藜芦醇衍生物的药代动力学研究 | 第15-20页 |
| 4 总结与展望 | 第20-21页 |
| 第二章 Rs-1和AcRs-1在大鼠体内的生物利用度研究 | 第21-60页 |
| 1 仪器设备和实验材料 | 第21-22页 |
| 1.1 仪器设备 | 第21页 |
| 1.2 药品和试剂 | 第21-22页 |
| 1.3 实验动物 | 第22页 |
| 1.4 数据处理 | 第22页 |
| 2 Rs-1血浆样品测定方法的建立 | 第22-37页 |
| 2.1 Rs-1 LC-MS/MS分析方法的建立 | 第22-24页 |
| 2.2 溶液的配制 | 第24页 |
| 2.3 Rs-1血浆样品和质控样品(QC)的制备 | 第24-25页 |
| 2.4 Rs-1血浆样品预处理方法的建立 | 第25-26页 |
| 2.5 血浆中Rs-1的代谢产物分析方法的建立 | 第26-30页 |
| 2.6 Rs-1血药浓度测定的方法学验证 | 第30-37页 |
| 3 AcRs-1血浆样品测定方法的建立 | 第37-49页 |
| 3.1 AcRs-1 LC-MS/MS分析方法的建立 | 第37-39页 |
| 3.2 溶液的配制 | 第39-40页 |
| 3.3 AcRs-1血浆样品和质控样品(QC)的制备 | 第40页 |
| 3.4 AcRs-1血浆样品预处理方法的建立 | 第40-41页 |
| 3.5 血浆中AcRs-1的代谢产物分析方法的建立 | 第41-43页 |
| 3.6 AcRs-1血药浓度测定的方法学验证 | 第43-49页 |
| 4 Rs-1和AcRs-1在大鼠体内的药代动力学研究 | 第49-51页 |
| 4.1 给药方案及样品采集 | 第49页 |
| 4.2 大鼠给药Rs-1血浆样品的测定 | 第49-50页 |
| 4.3 大鼠给药AcRs-1血浆样品的测定 | 第50-51页 |
| 4.4 数据分析及药代动力学参数计算 | 第51页 |
| 5 结果 | 第51-56页 |
| 5.1 大鼠口服灌胃Rs-1的药代动力学 | 第51-52页 |
| 5.2 大鼠静脉注射Rs-1的药代动力学 | 第52-54页 |
| 5.3 大鼠口服灌胃AcRs-1的药代动力学 | 第54页 |
| 5.4 大鼠静脉注射AcRs-1的药代动力学 | 第54-56页 |
| 6 讨论 | 第56-60页 |
| 6.1 生物样品预处理 | 第56-57页 |
| 6.2 测定Rs-1葡萄糖醛酸和硫酸酯结合物的血浆样品量的选择 | 第57页 |
| 6.3 药代动力学数据拟合方法选择 | 第57页 |
| 6.4 Rs-1及AcRs-1在大鼠血浆的药代动力学数据分析 | 第57-60页 |
| 第三章 Rs-1和AcRs-1在大鼠体内的排泄研究 | 第60-108页 |
| 1 仪器设备和实验材料 | 第60页 |
| 1.1 仪器设备 | 第60页 |
| 1.2 药品和试剂 | 第60页 |
| 1.3 实验动物 | 第60页 |
| 1.4 大鼠空白尿液和粪便的收集 | 第60页 |
| 2 Rs-1尿液样品测定方法的建立 | 第60-73页 |
| 2.1 Rs-1检测条件 | 第60页 |
| 2.2 溶液的配制 | 第60-61页 |
| 2.3 Rs-1尿液样品和质控样品(QC)的制备 | 第61页 |
| 2.4 Rs-1尿液样品预处理方法的建立 | 第61-62页 |
| 2.5 尿液中Rs-1的代谢产物分析方法的建立 | 第62-66页 |
| 2.6 尿液中Rs-1浓度测定的方法学验证 | 第66-73页 |
| 3 AcRs-1尿液样品测定方法的建立 | 第73-82页 |
| 3.1 AcRs-1检测条件 | 第73页 |
| 3.2 溶液的配制 | 第73页 |
| 3.3 AcRs-1尿液样品和质控样品(QC)的制备 | 第73页 |
| 3.4 AcRs-1尿液样品预处理方法的建立 | 第73-75页 |
| 3.5 尿液中AcRs-1的代谢产物分析方法的建立 | 第75-76页 |
| 3.6 尿液中AcRs-1浓度测定的方法学验证 | 第76-82页 |
| 4 Rs-1粪便样品测定方法的建立 | 第82-91页 |
| 4.1 Rs-1检测条件 | 第82页 |
| 4.2 溶液的配制 | 第82-83页 |
| 4.3 Rs-1粪便匀浆样品和质控样品(QC)的制备 | 第83页 |
| 4.4 Rs-1粪便匀浆样品预处理方法的建立 | 第83-84页 |
| 4.5 粪便中Rs-1浓度测定的方法学验证 | 第84-91页 |
| 5 AcRs-1粪便样品测定方法的建立 | 第91-101页 |
| 5.1 AcRs-1检测条件 | 第91页 |
| 5.2 溶液的配制 | 第91页 |
| 5.3 AcRs-1粪便匀浆样品和质控样品(QC)的制备 | 第91页 |
| 5.4 AcRs-1粪便样品预处理方法的建立 | 第91-93页 |
| 5.5 粪便中AcRs-1的代谢产物分析方法的建立 | 第93-95页 |
| 5.6 粪便中AcRs-1浓度测定的方法学验证 | 第95-101页 |
| 6 Rs-1和AcRs-1在大鼠体内的排泄实验 | 第101-104页 |
| 6.1 给药方案及样品采集 | 第101页 |
| 6.2 大鼠给药Rs-1排泄研究 | 第101-102页 |
| 6.3 大鼠给药AcRs-1排泄研究 | 第102-104页 |
| 7 结果 | 第104-106页 |
| 7.1 口服Rs-1 | 第104-105页 |
| 7.2 口服AcRs-1 | 第105-106页 |
| 8 讨论 | 第106-108页 |
| 8.1 AcRs-1在粪便中的预处理方法 | 第106页 |
| 8.2 测定Rs-1葡萄糖醛酸和硫酸酯结合物的尿液样品量的选择 | 第106页 |
| 8.3 AcRs-1在粪便中去乙酰化条件的选择 | 第106-107页 |
| 8.4 大鼠口服Rs-1或AcRs-1的排泄数据分析 | 第107-108页 |
| 总结 | 第108-110页 |
| 英文缩略词 | 第110-112页 |
| 参考文献 | 第112-121页 |
| 致谢 | 第121-122页 |
| 个人简历 | 第122-123页 |
