摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
英文缩略词表 | 第7-12页 |
第1章 引言 | 第12-24页 |
1.1 共轭亚油酸简介 | 第12-13页 |
1.2 CLA的结构 | 第13-14页 |
1.3 CLA的生理功能 | 第14-16页 |
1.3.1 抗癌作用 | 第14-15页 |
1.3.2 防止动脉硬化,影响脂质代谢 | 第15页 |
1.3.3 提高机体免疫力、促进生长 | 第15页 |
1.3.4 其他功能 | 第15-16页 |
1.4 反式脂肪酸简介 | 第16页 |
1.5 反油酸和异油酸简介 | 第16-17页 |
1.6 PPARΓ与肿瘤 | 第17-18页 |
1.7 CLA与细胞周期和细胞凋亡的关系 | 第18-21页 |
1.7.1 细胞周期调控 | 第18页 |
1.7.2 细胞凋亡调控 | 第18-19页 |
1.7.3 CLA与两者的关系 | 第19-21页 |
1.8 乳腺癌的发生与防治 | 第21-22页 |
1.8.1 乳腺癌 | 第21页 |
1.8.2 乳腺癌的防治方法 | 第21-22页 |
1.9 研究工作的意义及内容 | 第22-24页 |
1.9.1 课题来源 | 第22页 |
1.9.2 课题研究工作的意义 | 第22-23页 |
1.9.3 主要研究内容 | 第23-24页 |
第2章 3 种CLA异构体及VA对人乳腺癌MCF-7 细胞增殖的抑制和促凋亡作用 | 第24-42页 |
2.1 实验材料 | 第24-27页 |
2.1.1 细胞株来源 | 第24页 |
2.1.2 设备与试剂 | 第24-27页 |
2.2 实验方法 | 第27-29页 |
2.2.1 细胞培养和实验分组 | 第27-28页 |
2.2.2 肿瘤细胞抑制试验(MTT实验) | 第28页 |
2.2.3 荧光染色观察MCF-7 细胞凋亡 | 第28-29页 |
2.2.4 流式细胞术(FCM)检测3种CLA异构体及EA、VA对MCF-7细胞凋亡率及细胞周期变化的影响 | 第29页 |
2.2.5 统计方法 | 第29页 |
2.3 结果与讨论 | 第29-41页 |
2.3.1 MTT实验 | 第29-33页 |
2.3.2 荧光染色观察细胞凋亡形态学改变 | 第33-35页 |
2.3.3 FCM检测3种CLA异构体及EA、VA对MCF-7 细胞凋亡率及细胞周期变化的影响 | 第35-41页 |
2.4 本章小结 | 第41-42页 |
第3章 3 种CLA异构体及VA对乳腺癌细胞MCF-7 的促凋亡机理研究 | 第42-69页 |
3.1 实验材料 | 第42-46页 |
3.1.1 细胞株来源 | 第42页 |
3.1.2 设备与试剂 | 第42-46页 |
3.1.3 引物 | 第46页 |
3.2 实验方法 | 第46-53页 |
3.2.1 RT-PCR检测CLA异构体及EA、VA作用后MCF-7 细胞中PPARγ、bcl-xL和bcl-xS mRNA的表达 | 第46-50页 |
3.2.2 Western blot检测CLA及VA作用MCF-7 细胞后PPARγ、Bcl-2、Bax蛋白的表达 | 第50-53页 |
3.2.3 数据分析 | 第53页 |
3.3 结果与讨论 | 第53-67页 |
3.3.1 总RNA鉴定结果 | 第53-54页 |
3.3.2 c9,t11-CLA,t10,c12-CLA和t9,t11-CLA诱导乳腺癌细胞MCF-7 中PPARγ mRNA转录水平上调 | 第54-56页 |
3.3.3 RT-PCR检测凋亡相关基因bcl-xL和bcl-xS的表达情况 | 第56-60页 |
3.3.4 CLA异构体作用MCF-7 细胞后PPARγ与促凋亡基因bcl-xS的关系 | 第60-61页 |
3.3.5 蛋白含量测定 | 第61页 |
3.3.6 Western-blot检测PPARγ在各组中的表达及差异 | 第61-63页 |
3.3.7 Western-blot检测Bax,Bcl-2 蛋白在各组中的表达及差异 | 第63-67页 |
3.4 本章小结 | 第67-69页 |
第4章 结论与展望 | 第69-72页 |
4.1 结论 | 第69-70页 |
4.2 创新点 | 第70-71页 |
4.3 展望 | 第71-72页 |
致谢 | 第72-73页 |
参考文献 | 第73-81页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第81页 |