摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
1 绪论 | 第17-33页 |
1.1 杜仲 | 第17页 |
1.2 杜仲的化学成分 | 第17-20页 |
1.2.1 环烯醚萜类 | 第17-18页 |
1.2.2 木脂素类 | 第18页 |
1.2.3 苯丙素类 | 第18页 |
1.2.4 多糖类 | 第18-19页 |
1.2.5 黄酮类 | 第19页 |
1.2.6 杜仲胶 | 第19页 |
1.2.7 脂肪酸 | 第19-20页 |
1.2.8 氨基酸类、维生素及微量元素 | 第20页 |
1.3 杜仲的药理作用 | 第20-23页 |
1.3.1 降压作用 | 第20-21页 |
1.3.2 保肝、利胆和利尿作用 | 第21页 |
1.3.3 抗炎抗病毒作用 | 第21页 |
1.3.4 抗癌防癌作用 | 第21-22页 |
1.3.5 抗氧化、抗衰老作用 | 第22页 |
1.3.6 其他药理作用 | 第22-23页 |
1.4 杜仲中有效成分的提取分离方法 | 第23-25页 |
1.4.1 绿原酸的提取研究 | 第23页 |
1.4.2 环烯醚萜类化合物的提取研究 | 第23-24页 |
1.4.3 总黄酮的提取分离研究 | 第24页 |
1.4.4 杜仲胶的提取研究 | 第24页 |
1.4.5 其他成分 | 第24-25页 |
1.5 植物有效成分提取新技术 | 第25-27页 |
1.5.1 超声辅助提取技术 | 第25页 |
1.5.2 微波辅助提取技术 | 第25-26页 |
1.5.3 超临界流体萃取技术 | 第26-27页 |
1.5.4 生物酶解技术 | 第27页 |
1.6 离子液体辅助提取植物中有效成分 | 第27-28页 |
1.6.1 离子液体结构与性质 | 第27页 |
1.6.2 离子液体溶液在植物中有效成分提取中的应用 | 第27-28页 |
1.7 植物资源的多级化高效利用理念 | 第28-31页 |
1.8 研究目的及内容 | 第31-33页 |
1.8.1 研究目的 | 第31页 |
1.8.2 研究内容 | 第31-33页 |
2 杜仲目标有效成分分析方法的建立 | 第33-39页 |
2.1 仪器与材料 | 第33页 |
2.1.1 实验材料 | 第33页 |
2.1.2 实验试剂 | 第33页 |
2.1.3 实验仪器 | 第33页 |
2.2 实验方法 | 第33-34页 |
2.2.1 标准溶液的配制 | 第33-34页 |
2.2.2 吸收波长的选择 | 第34页 |
2.2.3 HPLC条件 | 第34页 |
2.2.4 样品溶液的制备 | 第34页 |
2.2.5 标准曲线的制作 | 第34页 |
2.2.6 方法学考察 | 第34页 |
2.3 结果与讨论 | 第34-37页 |
2.3.1 吸收波长的选择 | 第34-35页 |
2.3.2 色谱条件的优化 | 第35-36页 |
2.3.3 方法学验证 | 第36-37页 |
2.3.4 杜仲样品溶液的测定 | 第37页 |
2.4 本章小结 | 第37-39页 |
3 离子液体-酶辅助提取杜仲叶中绿原酸的工艺研究 | 第39-56页 |
3.1 仪器与材料 | 第40-41页 |
3.1.1 实验材料 | 第40页 |
3.1.2 实验试剂 | 第40-41页 |
3.1.3 实验设备 | 第41页 |
3.2 实验方法 | 第41-43页 |
3.2.1 杜仲胶的提取 | 第41页 |
3.2.2 提取溶剂的制备 | 第41页 |
3.2.3 离子液体酶辅助提取绿原酸 | 第41-42页 |
3.2.4 离子液体溶液中纤维素酶的酶活检测 | 第42页 |
3.2.5 大孔树脂纯化绿原酸 | 第42页 |
3.2.6 大孔树脂的再生性能考察 | 第42-43页 |
3.2.7 离子液体的活性炭脱色除杂 | 第43页 |
3.3 结果与讨论 | 第43-54页 |
3.3.1 酶的筛选 | 第43页 |
3.3.2 离子液体的筛选 | 第43-46页 |
3.3.3 离子液体-酶辅助提取方法的因素考察 | 第46-48页 |
3.3.4 不同溶剂体系中的绿原酸提取动力学考察 | 第48-49页 |
3.3.5 离子液体-酶辅助提取方法的机制初探 | 第49-50页 |
3.3.6 不同提取方法的比较 | 第50页 |
3.3.7 方法学考察 | 第50-51页 |
3.3.8 大孔树脂对IL-纤维素酶体系中绿原酸的分离 | 第51-53页 |
3.3.9 大孔树脂的再生性能 | 第53页 |
3.3.10 活性炭吸附离子液体 | 第53-54页 |
3.4 本章小结 | 第54-56页 |
4 杜仲翅果多级提取工艺研究 | 第56-70页 |
4.1 仪器与材料 | 第56页 |
4.1.1 实验材料 | 第56页 |
4.1.2 实验试剂 | 第56页 |
4.1.3 实验仪器 | 第56页 |
4.2 实验方法 | 第56-59页 |
4.2.1 杜仲翅果连续提取过程 | 第56-57页 |
4.2.2 杜仲种子油的超临界CO_2提取 | 第57页 |
4.2.3 杜仲种子油的超临界CO_2提取单因素试验 | 第57-58页 |
4.2.4 响应面法优化试验 | 第58页 |
4.2.5 杜仲种子油GC-MS分析 | 第58页 |
4.2.6 杜仲胶的提取 | 第58页 |
4.2.7 桃叶珊瑚苷的离子液体-超声辅助提取 | 第58-59页 |
4.3 结果与讨论 | 第59-69页 |
4.3.1 单因素试验 | 第59-60页 |
4.3.2 响应面法优化种子油的提取工艺试验结果 | 第60-63页 |
4.3.3 油脂不同提取方法的比较 | 第63-64页 |
4.3.4 脂肪酸提取后的翅果的SEM分析 | 第64-65页 |
4.3.5 杜仲翅果中桃叶珊瑚苷的离子液体-超声波辅助提取 | 第65-69页 |
4.4 本章小结 | 第69-70页 |
5 应用离子液体-酶原位萃取水解法从杜仲皮中制备京尼平 | 第70-82页 |
5.1 仪器与材料 | 第71-72页 |
5.1.1 实验材料 | 第71页 |
5.1.2 实验试剂 | 第71页 |
5.1.3 实验设备 | 第71-72页 |
5.2 实验方法 | 第72-73页 |
5.2.1 杜仲皮中杜仲胶的提取 | 第72页 |
5.2.2 离子液体-纤维素酶辅助提取京尼平和京尼平苷 | 第72页 |
5.2.3 提取率和增加量的计算公式 | 第72页 |
5.2.4 动力学模型 | 第72-73页 |
5.3 结果与讨论 | 第73-81页 |
5.3.1 离子液体-酶原位萃取水解机制 | 第73-74页 |
5.3.2 离子液体-酶原位萃取水解工艺优化 | 第74-77页 |
5.3.3 京尼平苷在β-葡萄糖苷酶催化下于不同反应介质中的水解反应的动力学模型 | 第77-80页 |
5.3.4 SEM分析 | 第80-81页 |
5.4 本章小结 | 第81-82页 |
6 杜仲皮多糖的提取、制备及体外抗氧化、免疫活性 | 第82-91页 |
6.1 仪器与材料 | 第82-83页 |
6.1.1 实验材料及试剂 | 第82页 |
6.1.2 实验仪器 | 第82-83页 |
6.2 实验方法 | 第83-85页 |
6.2.1 原料预处理 | 第83页 |
6.2.2 杜仲皮多糖的微波提取 | 第83页 |
6.2.3 Sevage法脱蛋白 | 第83-84页 |
6.2.4 紫外光谱、红外光谱分析 | 第84页 |
6.2.5 抗氧化能力测试 | 第84页 |
6.2.6 杜仲多糖样品对小鼠淋巴细胞增殖反应的影响 | 第84-85页 |
6.3 结果与讨论 | 第85-89页 |
6.3.1 杜仲皮多糖的微波提取工艺 | 第85-87页 |
6.3.2 紫外光谱分析 | 第87页 |
6.3.3 红外光谱分析 | 第87页 |
6.3.4 杜仲多糖抗氧化能力 | 第87-88页 |
6.3.5 杜仲多糖对小鼠脾淋巴细胞转化的影响 | 第88-89页 |
6.4 本章小结 | 第89-91页 |
7 杜仲活性物质提取后固形剩余物微波磷酸法制备活性炭 | 第91-96页 |
7.1 材料与仪器 | 第91-92页 |
7.2 实验方法 | 第92页 |
7.2.1 杜仲提取剩余固形物的活性炭制备 | 第92页 |
7.2.2 分析测试方法 | 第92页 |
7.2.3 正交试验设计 | 第92页 |
7.3 结果与讨论 | 第92-95页 |
7.3.1 正交试验数据分析 | 第92-94页 |
7.3.2 稳定性试验 | 第94-95页 |
7.4 本章小结 | 第95-96页 |
结论 | 第96-99页 |
参考文献 | 第99-106页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第106-107页 |
致谢 | 第107-108页 |