| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 引言 | 第14-21页 |
| 参考文献 | 第17-21页 |
| 第一部分 脊髓损伤处移植MSCs的分布及趋化因子的分析 | 第21-38页 |
| 材料与方法 | 第21-31页 |
| 一、材料 | 第21-24页 |
| 二、实验方法 | 第24-31页 |
| 结果 | 第31-33页 |
| 1. GFP标记的MSCs向大鼠脊髓损伤区域的迁移 | 第31-32页 |
| 2. 大鼠脊髓损伤处趋化因子的表达 | 第32-33页 |
| 讨论 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-38页 |
| 第二部分 SDF-1α对不同成神经分化状态MSCs趋化性迁移及相关信号通路的影响 | 第38-62页 |
| 材料与方法 | 第39-44页 |
| 一、材料 | 第39-41页 |
| 二、实验方法 | 第41-44页 |
| 结果 | 第44-53页 |
| 1. 不同成神经分化状态的MSCs向SDF-1α的趋化性迁移能力不同 | 第44-47页 |
| 2. SDF-1α诱导的粘着斑的合成及大小改变与MSCs的分化状态相关 | 第47-49页 |
| 3. SDF-1α刺激不同分化状态的MSCs中FAK和paxillin的磷酸化 | 第49-50页 |
| 4. 不同分化状态MSCs在定向迁移过程中FA的周转速率不同 | 第50-51页 |
| 5. PI3K/Akt和MAPKs信号通路参与SDF-1α诱导的MSCs中粘着斑的合成 | 第51-53页 |
| 讨论 | 第53-57页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |
| 第三部分 HGF对不同成神经分化状态MSCs趋化性迁移及相关信号通路的影响 | 第62-84页 |
| 材料与方法 | 第63-69页 |
| 一、材料 | 第63-64页 |
| 二、实验方法 | 第64-69页 |
| 结果 | 第69-79页 |
| 1. HGF激活MSCs中β-catenin信号 | 第69-71页 |
| 2. β-catenin信号促进不同分化状态MSCs的趋化性迁移 | 第71-73页 |
| 3. HGF通过激活β-catenin信号促进MSCs的迁移 | 第73-75页 |
| 4. Nedd9参与HGF诱导MSCs的趋化性迁移 | 第75-79页 |
| 讨论 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-84页 |
| 第四部分 Nedd9对星形胶质细胞的增殖、凋亡及转分化影响 | 第84-104页 |
| 材料与方法 | 第85-90页 |
| 一、材料 | 第85-87页 |
| 二、实验方法 | 第87-90页 |
| 结果 | 第90-100页 |
| 1. Nedd9对星形胶质细胞增殖的影响 | 第90-91页 |
| 2. Nedd9对星形胶质细胞凋亡的影响 | 第91-93页 |
| 3. Nedd9对星形胶质细胞向神经元转分化的影响 | 第93-96页 |
| 4. Doxycycline诱导Tet-on系统调节Nedd9的表达对星形胶质细胞向神经元转分化的影响 | 第96-100页 |
| 讨论 | 第100-101页 |
| 参考文献 | 第101-104页 |
| 第五部分 体内验证MSCs和星形胶质细胞对大鼠脊髓损伤的修复作用 | 第104-114页 |
| 材料与方法 | 第104-108页 |
| 一、材料 | 第104-105页 |
| 二、实验方法 | 第105-108页 |
| 结果 | 第108-111页 |
| 1. 预诱导24 h MSCs与未分化的MSCs在损伤脊髓中的趋化性迁移及对空洞的修复 | 第108-109页 |
| 2. 星形胶质细胞衍生的NSCs在损伤脊髓中的分化 | 第109-110页 |
| 3. BBB评分检测移植细胞对大鼠脊髓损伤的修复 | 第110-111页 |
| 讨论 | 第111-112页 |
| 参考文献 | 第112-114页 |
| 结论 | 第114-115页 |
| 综述 | 第115-138页 |
| 参考文献 | 第126-138页 |
| 攻读学位期间发表的论文和所获的奖励 | 第138-139页 |
| 本研究所获基金资助 | 第139-140页 |
| 缩略词表(Abbreviation) | 第140-142页 |
| 致谢 | 第142-143页 |
