| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 文献回顾 | 第17-31页 |
| 第一部分 去势大鼠骨质疏松模型的构建及PTH_(1-34)给药 | 第31-40页 |
| 1 材料 | 第31页 |
| 1.1 实验动物 | 第31页 |
| 1.2 药物、试剂及器材 | 第31页 |
| 2 方法 | 第31-34页 |
| 2.1 实验动物及分组 | 第31-32页 |
| 2.2 绝经后骨质疏松大鼠模型的构建 | 第32-34页 |
| 3. 结果 | 第34-38页 |
| 3.1 一般情况 | 第34页 |
| 3.2 大鼠骨质疏松模型的构建以及PTH_(1-34)对相关骨形态参数的影响 | 第34-37页 |
| 3.3 骨组织学观察 | 第37-38页 |
| 4. 讨论 | 第38-40页 |
| 4.1 骨质疏松模型的构建 | 第38-39页 |
| 4.2 骨质疏松动物模型的评价方法 | 第39页 |
| 4.3 动物实验层面上PTH对骨代谢的影响 | 第39-40页 |
| 第二部分 BMMSCS的分离、培养和鉴定 | 第40-48页 |
| 1. 材料 | 第40-41页 |
| 1.1 实验仪器 | 第40页 |
| 1.2 实验试剂 | 第40-41页 |
| 2.实验方法 | 第41-42页 |
| 2.1 BMMSCs的分离和培养 | 第41-42页 |
| 2.2 BMMSCs的免疫表型流式鉴定 | 第42页 |
| 2.3 BMMSCs增殖能力检测 | 第42页 |
| 3.实验结果 | 第42-45页 |
| 3.1 BMMSCs细胞形态学观察 | 第42-43页 |
| 3.2 细胞表面分子的检测 | 第43-44页 |
| 3.3 CCK-8 细胞增殖能力检测 | 第44-45页 |
| 4. 讨论 | 第45-48页 |
| 4.1 SD大鼠BMMSCs的分离与培养 | 第45-46页 |
| 4.2 SD大鼠BMMSCs的鉴定 | 第46-48页 |
| 第三部分 正常、去势与去势后加PTH_(1-34)大鼠BMMSCS的生物学特性比较 | 第48-64页 |
| 1. 实验材料 | 第48-49页 |
| 1.1 实验对象 | 第48页 |
| 1.2 实验仪器 | 第48页 |
| 1.3 实验试剂 | 第48-49页 |
| 2. 实验方法 | 第49-54页 |
| 2.1 BMMSCs增殖能力分析 | 第49页 |
| 2.2 BMMSCs成骨、成脂分化能力分析 | 第49-54页 |
| 3.实验结果 | 第54-60页 |
| 3.1 PTH对去势大鼠BMMSCs细胞周期的影响 | 第54-55页 |
| 3.2 PTH对去势大鼠BMMSCs凋亡率的影响 | 第55页 |
| 3.3 PTH对去势大鼠BMMSCs成骨分化的影响 | 第55-58页 |
| 3.4 PTH对去势大鼠BMMSCs成脂分化的影响 | 第58-60页 |
| 4. 讨论 | 第60-64页 |
| 4.1 绝经后骨质疏松BMMSCs功能异常 | 第60-61页 |
| 4.2 PTH对BMMSCs增殖凋亡特性的影响 | 第61-62页 |
| 4.3 PTH对BMMSCs成骨、成脂分化能力的影响 | 第62-64页 |
| 小结 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-79页 |
| 个人简历和研究成果 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80-82页 |
| 临床病例报告 | 第82-97页 |
