| 致谢 | 第4-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| 1 综述 | 第9-18页 |
| 1.1 烟草花叶病的危害 | 第9-10页 |
| 1.2 烟草花叶病的防治 | 第10页 |
| 1.3 植物抗病分子机制 | 第10-12页 |
| 1.3.1 抗病相关基因 | 第11页 |
| 1.3.2 其他抗病相关机制 | 第11-12页 |
| 1.4 植物抗逆分子机制 | 第12-14页 |
| 1.4.1 活性氧与植物的逆境胁迫响应 | 第12-13页 |
| 1.4.2 HSP与植物逆境胁迫响应 | 第13页 |
| 1.4.3 H_2O_2信号途径与植物逆境胁迫响应 | 第13-14页 |
| 1.5 海藻糖的结构、合成与代谢 | 第14-15页 |
| 1.6 海藻糖参与植物的抗病过程 | 第15-16页 |
| 1.7 海藻糖参与植物的抗逆过程 | 第16页 |
| 1.8 转录组测序在植物抗病和抗逆研究中的应用 | 第16-18页 |
| 2.引言 | 第18-19页 |
| 3.材料与方法 | 第19-27页 |
| 3.1 实验材料与处理方法 | 第19页 |
| 3.2 实验方法 | 第19-27页 |
| 3.2.1 海藻糖对病毒钝化检测 | 第19-20页 |
| 3.2.1.1 TMV粗提纯 | 第19页 |
| 3.2.1.2 枯斑实验 | 第19-20页 |
| 3.2.2 海藻糖对烟草抗逆能力作用检测 | 第20-24页 |
| 3.2.2.1 过氧化氢染色 | 第20页 |
| 3.2.2.2 超氧阴离子染色 | 第20页 |
| 3.2.2.3 过氧化物酶（POD）活性测定 | 第20-21页 |
| 3.2.2.4 超氧物歧化酶（SOD）活性测定 | 第21-22页 |
| 3.2.2.5 脯氨酸含量测定 | 第22-23页 |
| 3.2.2.6 丙二醛含量测定 | 第23页 |
| 3.2.2.7 可溶性糖含量测定 | 第23-24页 |
| 3.2.3 海藻糖对烟草抗逆基因作用检测 | 第24-26页 |
| 3.2.3.1 引物设计 | 第24页 |
| 3.2.3.2 Trizol法提取RNA | 第24-25页 |
| 3.2.3.3 反转录 | 第25-26页 |
| 3.2.3.4 荧光定量PCR | 第26页 |
| 3.2.4 海藻糖对气孔作用检测 | 第26页 |
| 3.2.5 转录组测序 | 第26-27页 |
| 4.结果与分析 | 第27-42页 |
| 4.1 海藻糖增强烟叶对TMV的抗性 | 第27页 |
| 4.2 海藻糖对烟草抗氧化胁迫水平的影响 | 第27-29页 |
| 4.3 海藻糖对烟草渗透调节物质的影响 | 第29-30页 |
| 4.4 海藻糖的信号转导途径分析 | 第30页 |
| 4.5 转录组分析海藻糖增强烟草抗病性的分子机理 | 第30-42页 |
| 4.5.1 转录组数据质量评估及数据预处理 | 第30-32页 |
| 4.5.2 转录组功能注释 | 第32-34页 |
| 4.5.3 基因表达差异分析 | 第34-35页 |
| 4.5.4 蛋白互作分析 | 第35-38页 |
| 4.5.5 KEGG途径分析 | 第38-41页 |
| 4.5.6 qPCR验证 | 第41-42页 |
| 5.讨论 | 第42-45页 |
| 5.1 海藻糖增强烟草对TMV的抗性 | 第42-43页 |
| 5.2 海藻糖处理诱发H_2O_2增加 | 第43页 |
| 5.3 海藻糖对渗透调节物质影响 | 第43页 |
| 5.4 HSP与HSF参与烟草对海藻糖的早期响应（2H） | 第43-44页 |
| 5.5 参与烟草对海藻糖的早期响应（2H）的抗病和抗逆基因 | 第44-45页 |
| 5.6 参与烟草对海藻糖的晚期响应（24H）的抗病和抗逆基因 | 第45页 |
| 6．结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-56页 |
| ABSTRACT | 第56-57页 |
