中文摘要 | 第4-10页 |
Abstract | 第10-16页 |
英文缩写词表 | 第20-22页 |
前言 | 第22-24页 |
第1章 文献综述 | 第24-54页 |
1.1 支气管哮喘 | 第24-29页 |
1.1.1 气道炎症形成机制 | 第25-28页 |
1.1.2 气道重塑学说机制 | 第28-29页 |
1.2 肾素-血管紧张素系统 | 第29-39页 |
1.2.1 血管紧张素原(AGT) | 第31页 |
1.2.2 管紧张素Ⅱ(Ang Ⅱ) | 第31-35页 |
1.2.3 肾素(renin) | 第35页 |
1.2.4 血管紧张素转换酶(ACE) | 第35-38页 |
1.2.5 血管紧张素转换酶2 | 第38页 |
1.2.6 血管紧张素受体 | 第38-39页 |
1.3 糜酶 | 第39-48页 |
1.3.1 糜酶概述 | 第39-41页 |
1.3.2 糜酶的功能 | 第41页 |
1.3.3 糜酶在血管中的作用 | 第41-42页 |
1.3.4 从Ang Ⅰ到Ang Ⅱ的转换 | 第42-43页 |
1.3.5 糜酶在脉管系统的病理生理学功能 | 第43-46页 |
1.3.6 肥大细胞的稳定作用 | 第46-47页 |
1.3.7 糜酶抑制剂 | 第47页 |
1.3.8 血管疾病动物模型中的糜酶抑制剂 | 第47-48页 |
1.4 糜酶、肾素血管紧张素系统与哮喘 | 第48-54页 |
1.4.1 RAS与哮喘 | 第49-50页 |
1.4.2 NF-κB介导的肺组织炎症改变 | 第50-54页 |
第2章 材料与方法 | 第54-64页 |
2.1 实验材料 | 第54-56页 |
2.1.1 主要试剂 | 第54页 |
2.1.2 主要仪器 | 第54-55页 |
2.1.3 肺组织蛋白裂解液 | 第55页 |
2.1.4 Western Blotting相关试剂 | 第55-56页 |
2.1.5 4%多聚甲醛溶液 | 第56页 |
2.2 实验方法 | 第56-62页 |
2.2.1 实验动物分组 | 第56-57页 |
2.2.2 小鼠哮喘模型的建立 | 第57页 |
2.2.3 小鼠肺组织标本采集 | 第57页 |
2.2.4 肺脏组织形态学检测 | 第57-58页 |
2.2.5 肺脏组织免疫组织化学染色 | 第58-59页 |
2.2.6 RT-PCR检测肺脏组织目的基因mRNA表达 | 第59-61页 |
2.2.7 Western-blot检测肺脏组织目的蛋白的表达 | 第61-62页 |
2.2.8 血清中Ang Ⅰ及Ang Ⅱ含量的测定 | 第62页 |
2.3 统计学处理 | 第62-64页 |
第3章 实验结果 | 第64-84页 |
3.1 肺组织形态学变化 | 第64-67页 |
3.1.1 肺脏组织HE染色光学显微镜观察 | 第64-65页 |
3.1.2 电镜照片观察各组肺组织结构变化 | 第65-67页 |
3.2 肺组织免疫组织化学染色观察RAS相关蛋白的表达变化 | 第67-74页 |
3.2.1 肺组织AT_1R的免疫组织化学染色 | 第67-69页 |
3.2.2 肺组织AT_2R的免疫组织化学染色 | 第69-70页 |
3.2.3 肺组织ACE的免疫组织化学染色 | 第70-72页 |
3.2.4 肺组织ACE2的免疫组织化学染色 | 第72-73页 |
3.2.5 肺组织chymase的免疫组织化学染色 | 第73-74页 |
3.3 Western-blot检测肺组织中RAS相关蛋白表达的变化 | 第74-79页 |
3.3.1 ACE抑制剂对RAS系统相关蛋白表达的影响 | 第74-75页 |
3.3.2 AT_1R拮抗剂对RAS系统各组分蛋白表达的的影响 | 第75-76页 |
3.3.3 糜酶抑制剂对RAS系统各组分蛋白表达的的影响 | 第76-77页 |
3.3.4 糜酶抑制剂对NF-κB(p65/p50)蛋白表达的的影响 | 第77-79页 |
3.4 RT-PCR检测肺组织中RAS相关基因表达的变化 | 第79-82页 |
3.4.1 ACE抑制剂对RAS系统相关基因mRNA表达的的影响 | 第79-80页 |
3.4.2 AT_1R拮抗剂对RAS系统相关基因mRNA表达的的影响 | 第80-81页 |
3.4.3 糜酶抑制剂对RAS系统相关基因mRNA表达的影响 | 第81-82页 |
3.5 各组小鼠血清中Ang Ⅱ与Ang Ⅰ的含量变化 | 第82-84页 |
第4章 讨论 | 第84-92页 |
第5章 结论 | 第92-94页 |
参考文献 | 第94-106页 |
攻读博士期间发表的学术论文和科研 | 第106-108页 |
致谢 | 第108页 |