| 中文摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 英语縮写一览表 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 第一部分 异种血清诱导大鼠肝纤维化模型的建立及鳖甲煎口服液的干预作用 | 第16-25页 |
| 一、实验材料与方法 | 第16-19页 |
| (一) 实验材料 | 第16-17页 |
| 1. 实验动物 | 第16页 |
| 2. 主要试剂 | 第16页 |
| 3. 药材 | 第16页 |
| 4. 主要器材及设备 | 第16-17页 |
| (二) 实验方法 | 第17-19页 |
| 1. 实验分组 | 第17页 |
| 2. 纤维化模型制备 | 第17页 |
| 3. 鳖甲煎口服液干预 | 第17页 |
| 4. 样品采集与制备 | 第17页 |
| 5. 指标检测 | 第17-19页 |
| 6. 统计分析 | 第19页 |
| 二、结果 | 第19-23页 |
| (一) 大鼠生存状态及肝脏、脾脏指数变化 | 第19-20页 |
| (二) 肝脏组织病理学改变 | 第20-21页 |
| (三) 大鼠血清AST和ALT水平的变化 | 第21页 |
| (四) 大鼠血清HA、LN、PcⅢ、Ⅳ.C含量的变化 | 第21-23页 |
| 三、分析与讨论 | 第23-24页 |
| 四、小结 | 第24-25页 |
| 第二部分 异种血清诱导大鼠肝纤维化过程中自由基的检测及鳖甲煎口服液的干预作用 | 第25-32页 |
| 一、实验材料与方法 | 第25-27页 |
| (一) 实验材料 | 第25-26页 |
| 1. 实验动物 | 第25页 |
| 2. 主要试剂 | 第25页 |
| 3. 药材 | 第25页 |
| 4. 主要器材与设备 | 第25-26页 |
| (二) 实验方法 | 第26-27页 |
| 1. 实验分组 | 第26页 |
| 2. 纤维化模型的制备 | 第26页 |
| 3. 药物干预 | 第26页 |
| 4. 样品采集与制备 | 第26页 |
| 5. 指标检测 | 第26-27页 |
| 二、结果 | 第27-29页 |
| 三、分析与讨论 | 第29-31页 |
| 四、小结 | 第31-32页 |
| 第三部分 异种血清致大鼠肝纤维化过程中RAAS系统的变化及鳖甲煎口服液的干预作用 | 第32-50页 |
| 一、实验材料与方法 | 第32-37页 |
| (一) 实验材料 | 第32-33页 |
| 1. 实验动物 | 第32页 |
| 2. 主要试剂 | 第32页 |
| 3. 药材 | 第32页 |
| 4. 主要器材与设备 | 第32-33页 |
| (二) 实验方法 | 第33-37页 |
| 1. 实验分组 | 第33页 |
| 2. 纤维化模型的制备 | 第33页 |
| 3. 药物干预 | 第33页 |
| 4. 样品采集与制备 | 第33页 |
| 5. 指标检测 | 第33-37页 |
| 6. 统计分析 | 第37页 |
| 二、结果 | 第37-45页 |
| (一) 大鼠肝脏组织病理学检查 | 第37-38页 |
| (二) 大鼠肝脏AngⅡ、Ang(1-7)含量的变化 | 第38-40页 |
| (三) 大鼠肝脏ACE、AT_1R、ACE2及Mas表达 | 第40-45页 |
| (四) 大鼠肝脏GEN、AGT、ACE、AT_1R和CYP11b2 mRNA表达变化 | 第45页 |
| 三、分析与讨论 | 第45-49页 |
| 四、小结 | 第49-50页 |
| 第四部分 PPAR-γ、NF-κB及Nrf2通路与肝纤维化的相关性及鳖甲煎口服液的干预作用 | 第50-59页 |
| 一、实验材料与方法 | 第50-53页 |
| (一) 实验材料 | 第50-51页 |
| 1. 实验动物 | 第50页 |
| 2. 主要试剂 | 第50页 |
| 3. 药材 | 第50页 |
| 4. 主要器材与设备 | 第50-51页 |
| (二) 实验方法 | 第51-53页 |
| 1. 实验分组 | 第51页 |
| 2. 纤维化模型的制备 | 第51页 |
| 3. 药物干预 | 第51页 |
| 4. 样品采集与制备 | 第51页 |
| 5. 指标检测 | 第51-53页 |
| 二、结果 | 第53-54页 |
| (一) 大鼠肝脏PPAR-γ、NF-κB/IκBα及Keap1/Nrf2蛋白的表达 | 第53-54页 |
| 三、分析与讨论 | 第54-58页 |
| 四、小结 | 第58-59页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 文献综述 | 第68-79页 |
| 参考文献 | 第76-79页 |
