摘要 | 第4-5页 |
ABSTRACT | 第5-6页 |
1. 前言 | 第10-28页 |
1.1 香蕉概述 | 第10-12页 |
1.1.1 香蕉分类及其生物学特性 | 第10页 |
1.1.2 香蕉的经济价值 | 第10-11页 |
1.1.3 香蕉对环境条件的要求 | 第11-12页 |
1.1.4 香蕉抗逆品种改良的重要性 | 第12页 |
1.2. 非生物胁迫相关机制研究进展 | 第12-17页 |
1.2.1 植物胁迫应答机制 | 第13-14页 |
1.2.2 植物非生物胁迫信号转导途径 | 第14-16页 |
1.2.3 香蕉非生物胁迫相关基因的研究 | 第16-17页 |
1.3 香蕉枯萎病研究进展 | 第17-20页 |
1.3.1 香蕉枯萎病概述 | 第17-19页 |
1.3.2 香蕉抗枯萎病相关基因的研究 | 第19-20页 |
1.4 MADS-box基因研究现状 | 第20-27页 |
1.4.1 MADS-box基因家族概述 | 第20-26页 |
1.4.2 香蕉中MADS-box基因研究进展 | 第26-27页 |
1.5 本研究的目的和意义 | 第27页 |
1.6 技术路线 | 第27-28页 |
2 材料、试剂、仪器 | 第28-29页 |
2.1. 植物材料 | 第28页 |
2.2 实验试剂 | 第28页 |
2.3 培养基 | 第28页 |
2.4 实验仪器 | 第28-29页 |
3 方法 | 第29-42页 |
3.1 RACE获得MuMADS3-MuMADS15 cDNA全长序列 | 第29-36页 |
3.1.1 香蕉MADS-box基因5’端及3’端序列的克隆 | 第29-34页 |
3.1.2 香蕉MADS-box基因的全长克隆 | 第34-35页 |
3.1.3 生物信息学分析 | 第35-36页 |
3.2 13个MADS-box基因在香蕉各器官的差异表达分析 | 第36-40页 |
3.2.1 材料处理 | 第36页 |
3.2.2 香蕉不同器官总RNA提取 | 第36-37页 |
3.2.3 cDNA第一链的合成 | 第37-38页 |
3.2.4 RT-PCR引物设计及检测 | 第38-39页 |
3.2.5 荧光定量PCR的反应体系和反应程序 | 第39-40页 |
3.2.6 荧光定量PCR的定量方法 | 第40页 |
3.3 香蕉幼苗生物胁迫处理基因表达分析 | 第40-41页 |
3.3.1 香蕉镰刀菌枯萎病4号小种侵染香蕉苗 | 第40-41页 |
3.3.2 RT-PCR检测13个MADS-box基因在香蕉生物胁迫下的表达 | 第41页 |
3.4 香蕉幼苗非生物胁迫处理基因表达分析 | 第41-42页 |
3.4.1 盐胁迫处理 | 第41页 |
3.4.2 低温胁迫处理 | 第41-42页 |
3.4.3 干旱胁迫处理 | 第42页 |
3.4.4 RT-PCR检测13个MADS-box基因在香蕉非生物胁迫下的表达 | 第42页 |
4 结果 | 第42-58页 |
4.1 Foc4处理下香蕉根系转录组MADS-box基因差异表达数据分析 | 第42-43页 |
4.2 8个MADS-box基因的全长克隆与生物信息学分析 | 第43-48页 |
4.2.1 5’端和3’端序列的PCR扩增结果 | 第43-44页 |
4.2.2 全长序列的PCR扩增结果 | 第44-45页 |
4.2.3 生物信息学分析 | 第45-48页 |
4.3 13个MADS-box基因在香蕉各器官的差异表达 | 第48-50页 |
4.4 13个MADS-box基因在香蕉枯萎病病程中的表达 | 第50-52页 |
4.5 13个MADS-box基因对非生物胁迫的应答 | 第52-58页 |
4.5.1 13个MADS-box基因在香蕉苗盐胁迫下的差异表达 | 第52-54页 |
4.5.2 MuMADS3-MuMADS15在低温胁迫下的差异表达 | 第54-56页 |
4.5.3 MuMADS3-MuMADS15在干旱胁迫下的差异表达 | 第56-58页 |
5 讨论 | 第58-63页 |
5.1 13个MADS-box基因的氨基酸序列分析 | 第58-59页 |
5.2 13个MADS-box基因器官特异性表达分析 | 第59-61页 |
5.3 13个MADS-box基因与逆境胁迫的关系 | 第61-63页 |
5.3.1 13个MADS-box基因与香蕉枯萎病 | 第61-62页 |
5.3.2 13个MADS-box基因与非生物胁迫 | 第62-63页 |
6 结论 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-78页 |
致谢 | 第78页 |