| 摘要 | 第2-4页 |
| abstract | 第4-6页 |
| 引言 | 第9-12页 |
| 第一章 材料和方法 | 第12-24页 |
| 1.1 材料 | 第12-16页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第12页 |
| 1.1.2 主要仪器设备 | 第12-13页 |
| 1.1.3 实验试剂 | 第13-14页 |
| 1.1.4 主要溶液配制 | 第14-16页 |
| 1.2 实验方法及检测指标 | 第16-24页 |
| 1.2.1 组织分离、细胞培养 | 第16-17页 |
| 1.2.2 细胞纯化 | 第17页 |
| 1.2.3 克隆形成实验 | 第17-18页 |
| 1.2.4 引物的设计和合成 | 第18页 |
| 1.2.5 BMP12及Smad1基因的敲除 | 第18-19页 |
| 1.2.6 EGR1诱导TSCs向肌腱细胞分化及免疫荧光鉴定 | 第19-20页 |
| 1.2.7 RNA提取与实时定量PCR检测 | 第20页 |
| 1.2.8 Western blot具体步骤 | 第20-22页 |
| 1.2.9 兔肩袖损伤模型建立 | 第22页 |
| 1.2.10 肩袖修补手术 | 第22-23页 |
| 1.2.11 组织学及免疫组化分析 | 第23-24页 |
| 第二章 结果 | 第24-31页 |
| 2.1 兔肌腱干细胞的分离、培养、鉴定及免疫荧光染色结果 | 第24-25页 |
| 2.1.1 兔肌腱干细胞（rTSCs）的形态及生长特性 | 第24-25页 |
| 2.1.2 DAPI染色结果 | 第25页 |
| 2.1.3 TNMD、SCX抗体免疫荧光观察 | 第25页 |
| 2.2 EGR1诱导TSCs向肌腱细胞分化部分结果 | 第25-28页 |
| 2.2.1 转染效率观察 | 第25-26页 |
| 2.2.2 转染结果观察 | 第26-27页 |
| 2.2.3 肌腱特异标记表达水平检测 | 第27-28页 |
| 2.3 EGR1对TSCs诱导分化能力的检测与评估结果 | 第28页 |
| 2.4 EGR1、PRP相关生长因子对肩袖损伤后肌腱愈合过程的影响 | 第28-31页 |
| 2.4.1 HE染色结果 | 第28页 |
| 2.4.2 Collagen type I免疫荧光染色结果 | 第28页 |
| 2.4.3 实验动物数量分析 | 第28-31页 |
| 第三章 讨论 | 第31-36页 |
| 第四章 结论 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-41页 |
| 综述 | 第41-49页 |
| 综述参考文献 | 第46-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 作者简介 | 第50-51页 |
