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金黄色葡萄球菌超抗原样蛋白Set11的结构与功能研究

摘要第5-7页
ABSTRACT第7-8页
第一篇 金黄色葡萄球菌超抗原样蛋白Set11的结构与功能研究第12-68页
    第一章 绪论第12-24页
        1.1 引言第12-13页
        1.2 超抗原蛋白和超抗原样蛋白第13-15页
            1.2.1 超抗原蛋白和超抗原样蛋白概述第13-14页
            1.2.2 超抗原样蛋白的分类第14-15页
        1.3 超抗原样蛋白SSL的结构与功能研究第15-23页
            1.3.1 超抗原样蛋白Set3的结构与功能研究第15-16页
            1.3.2 SSL5、SSL11、SSLA及唾液酸路易斯酸X的结构与功能研究第16-19页
            1.3.3 SSL7与免疫球蛋白IgA1的Fc片段及补体C5的结构与功能研究第19-21页
            1.3.4 超抗原样蛋白SSL3与Toll样受体2(TLR2)的结构与功能研究第21-23页
        1.4 选题意义和研究内容第23-24页
    第二章 实验材料和方法第24-40页
        2.1 材料和仪器第24-26页
            2.1.1 实验材料第24-25页
                2.1.1.1 实验试剂第24页
                2.1.1.2 实验质粒、菌株和培养基第24-25页
            2.1.2 仪器设备第25-26页
        2.2 Sa-Set11表达质粒的构建第26-30页
            2.2.1 PCR反应体系和程序第27-28页
            2.2.2 PCR产物和载体的双酶切反应第28页
            2.2.3 连接反应第28页
            2.2.4 转化反应第28-29页
            2.2.5 重组质粒菌落PCR鉴定、质粒DNA的提取和质粒PCR鉴定第29-30页
        2.3 Set11截短体质粒构建第30-31页
        2.4 蛋白表达第31-34页
            2.4.1 可溶性蛋白表达条件的筛选和优化第31-33页
            2.4.2 蛋白的大量表达第33-34页
        2.5 Set11及其截短体蛋白的纯化第34-35页
        2.6 蛋白酶解实验第35页
        2.7 蛋白质赖氨酸甲基化处理第35-36页
        2.8 Set11晶体的初筛和优化第36-37页
            2.8.1 Set11晶体的初筛第36页
            2.8.2 晶体生长条件的优化第36-37页
        2.9 鉴定Set11可能的相互作用蛋白第37-40页
            2.9.1 CNBr-Pull down实验第37-40页
    第三章 实验结果和讨论第40-64页
        3.1 重组表达质粒的构建和蛋白试表达第40-41页
        3.2 Set11蛋白、截短体蛋白的纯化第41-44页
        3.3 Set11晶体生长第44-49页
        3.4 Set11与SSL1-14多序列比对第49-51页
        3.5 Set11同源结构模型的构建第51-52页
        3.6 Set11-C5复合物同源结构模型的构建第52-53页
        3.7 鉴定人血/血清中Set11可能的相互作用蛋白第53-62页
            3.7.1 通过CNBr-Pull down实验鉴定相互作用蛋白第54-62页
        3.8 本章小结第62-64页
    参考文献第64-68页
第二篇 E3泛素连接酶TRAIP蛋白RING Domain结构和功能研究第68-94页
    第一章 绪论第68-78页
        1.1 引言第68-69页
        1.2 E3泛素连接酶TRAIP蛋白第69-74页
            1.2.1 E3泛素连接酶TRAIP蛋白概述第69-71页
            1.2.2 E3泛素连接酶参与蛋白泛素化过程第71-73页
            1.2.3 E3泛素连接酶TRAIP蛋白在增殖和分化中的作用第73-74页
        1.3 E3泛素连接酶TRAIP蛋白RING Domain第74-76页
            1.3.1 E3泛素连接酶TRAIP蛋白RING Domain在不同物种中的保守性第74页
            1.3.2 E3泛素连接酶TRAIP蛋白RING Domain在自泛素化中的作用第74-76页
        1.4 选题意义和研究内容第76-78页
    第二章 实验材料和方法第78-82页
        2.1 材料和仪器第78页
            2.1.1 实验材料第78页
                2.1.1.1 实验试剂第78页
                2.1.1.2 实验质粒、菌株和培养基第78页
            2.1.2 仪器设备第78页
        2.2 TRAIP蛋白RING Domain表达质粒的构建第78页
        2.3 TRAIP蛋白RING Domain截短体质粒构建第78-79页
        2.4 蛋白表达第79页
            2.4.1 可溶性蛋白表达条件的筛选和优化第79页
            2.4.2 小量试表达检测第79页
        2.5 蛋白表达及纯化第79-80页
        2.6 蛋白酶解实验第80页
        2.7 晶体筛选第80-82页
    第三章 实验结果和讨论第82-92页
        3.1 重组表达质粒的构建和蛋白试表达第82-83页
        3.2 TRAIP蛋白RING Domain截短体蛋白纯化第83-87页
        3.3 TRAIP蛋白RING Domain晶体生长第87-90页
        3.4 本章小结第90-92页
    参考文献第92-94页
致谢第94-95页

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