英文缩写词 | 第10-11页 |
综述 脑出血后的神经细胞凋亡 | 第11-28页 |
Caspases和bcl-2家族蛋白与细胞凋亡 | 第16-23页 |
1 Caspases家族蛋白 | 第16-20页 |
1.1 Caspases家族蛋白分类和生化性质 | 第16-18页 |
1.2 Caspases家族蛋白与细胞凋亡 | 第18-19页 |
1.3 Caspases的激活途径 | 第19-20页 |
2 Bcl-2家族蛋白 | 第20-23页 |
2.1 Bcl-2家族蛋白的结构和分布 | 第20页 |
2.2 Bcl-2家族蛋白对细胞凋亡的调节 | 第20-23页 |
凝血酶的神经毒性及其抑制剂水蛭素的作用机制 | 第23-28页 |
1 凝血酶的结构、功能和神经毒性作用 | 第23-26页 |
1.1 凝血酶的化学结构 | 第23页 |
1.2 凝血酶在凝血途径中的作用 | 第23页 |
1.3 凝血酶对细胞的调节作用 | 第23-24页 |
1.4 脑出血后凝血酶对脑组织的损伤作用 | 第24-26页 |
2 水蛭素的结构和作用机理 | 第26-28页 |
2.1 水蛭素的组成和结构 | 第26页 |
2.2 水蛭素的抗凝血酶作用机制 | 第26-28页 |
前言 | 第28-30页 |
第一部分 实验性脑出血动物模型制作和病理损伤 | 第30-42页 |
材料与方法 | 第30-35页 |
1 大鼠实验性ICH动物模型制作方法 | 第30-31页 |
2 制石蜡切片步骤 | 第31页 |
3 HE染色方法 | 第31页 |
4 亚甲蓝染色方法 | 第31页 |
5 LFB(Luxol Fast blue)染色方法 | 第31-32页 |
6 PTAH染色方法 | 第32页 |
7 电镜标本制作方法 | 第32-33页 |
8 MAP-2、GFAP免疫组化染色方法 | 第33-35页 |
结果 | 第35-37页 |
1 实验性ICH后动物的行为学变化 | 第35页 |
2 实验性ICH后脑组织和神经细胞的病理变化 | 第35页 |
3 电镜下的病理变化 | 第35-36页 |
4 MAP-2、GFAP免疫组化染色结果 | 第36-37页 |
4.1 MAP-2免疫组化染色结果 | 第36页 |
4.2 GFAP免疫组化染色结果 | 第36-37页 |
小结 | 第37-42页 |
1 ICH动物模型的选择 | 第37-39页 |
2 实验性ICH后的病理变化 | 第39-40页 |
3 实验性ICH后的细胞骨架损伤 | 第40-42页 |
第二部分 实验性脑出血后的细胞凋亡和凋亡相关基因转录和蛋白表达水平 | 第42-56页 |
材料与方法 | 第42-46页 |
1 大鼠实验性ICH动物模型制作方法 | 第42页 |
2 Bcl-2、bax、caspase-3和TNF-α免疫组化染色方法 | 第42页 |
3 原位细胞凋亡检测(TUNEL)方法 | 第42-43页 |
4 流式细胞仪检测方法 | 第43页 |
5 DNA电泳 | 第43-45页 |
6 RT-PCR检测血肿周围组织caspase-3 mRNA的含量 | 第45页 |
7 统计分析 | 第45-46页 |
结果 | 第46-49页 |
1 Bcl-2、bax、caspase-3免疫组化染色和TUNEL标记结果 | 第46页 |
2 TNF-α免疫组化结果 | 第46页 |
3 流式细胞仪检测结果 | 第46-47页 |
4 DNA电泳结果 | 第47-48页 |
5 血肿周围组织caspase-3 mRNA的含量 | 第48-49页 |
小结 | 第49-56页 |
1 实验性ICH后的细胞凋亡 | 第49-52页 |
2 实验性ICH后凋亡相关基因转录和蛋白表达水平 | 第52-56页 |
2.1 Caspase-3的转录和表达 | 第52-54页 |
2.2 bcl-2家族蛋白的表达 | 第54-56页 |
第三部分 水蛭素对实验性脑出血后脑组织损伤的保护作用 | 第56-64页 |
材料与方法 | 第56-57页 |
1 水蛭素干预组大鼠实验性ICH动物模型制作方法 | 第56页 |
2 HE染色方法 | 第56页 |
3 MAP、GFAP和caspase-3免疫组化染色方法 | 第56页 |
4 原位细胞凋亡检测(TUNEL)方法 | 第56页 |
5 统计分析 | 第56-57页 |
结果 | 第57-58页 |
小结 | 第58-64页 |
结论 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-73页 |
就读博士研究生期间的课题和论文 | 第73-74页 |
中文摘要 | 第74-78页 |
英文摘要 | 第78页 |
致谢 | 第80-81页 |