中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
缩略语/符号说明 | 第11-12页 |
前言 | 第12-14页 |
研究现状、成果 | 第12-13页 |
研究目的、方法 | 第13-14页 |
一、Hcy对局灶性脑梗死大鼠NSCs增殖分化的影响 | 第14-42页 |
1.1 材料和方法 | 第14-20页 |
1.1.1 材料 | 第14-16页 |
1.1.2 方法 | 第16-20页 |
1.1.3 统计分析 | 第20页 |
1.2 结果 | 第20-34页 |
1.2.1 不同干预对MCAO模型大鼠体重的影响 | 第20-21页 |
1.2.2 各组大鼠体内Hcy水平检测结果 | 第21-24页 |
1.2.3 不同干预对脑梗死大鼠梗死灶体积百分比的影响 | 第24-26页 |
1.2.4 不同干预对脑梗死大鼠脑组织形态的影响 | 第26-27页 |
1.2.5 不同干预对脑梗死大鼠神经细胞凋亡率的影响 | 第27-29页 |
1.2.6 不同干预对脑梗死大鼠脑内DCX~+/BrdU~+细胞数量的影响 | 第29-31页 |
1.2.7 不同干预对脑梗死大鼠脑内NeuN~+/BrdU~+细胞数量的影响 | 第31-34页 |
1.3 讨论 | 第34-40页 |
1.3.1 MCAO模型的应用 | 第34页 |
1.3.2 不同干预对MCAO模型大鼠梗死灶体积百分比的影响 | 第34-35页 |
1.3.3 不同干预对脑梗死大鼠神经凋亡细胞的影响 | 第35-36页 |
1.3.4 神经再生过程中NSCs增殖、迁移和化的鉴定 | 第36-38页 |
1.3.5 局灶性脑缺血与神经再生 | 第38-39页 |
1.3.6 Hcy对脑梗死大鼠内源性NSCs增殖迁移分化的影响 | 第39-40页 |
1.4 小结 | 第40-42页 |
二、Hcy对局灶性脑缺血大鼠NSCs增殖分化作用机制研究 | 第42-59页 |
2.1 材料和方法 | 第42-46页 |
2.1.1 材料 | 第42-43页 |
2.1.2 方法 | 第43-46页 |
2.1.3 统计分析 | 第46页 |
2.2 结果 | 第46-54页 |
2.2.1 不同干预对脑梗死大鼠脑组织DNMTs活性的影响 | 第46-47页 |
2.2.2 不同干预对大鼠血浆SAM、SAH及SAM/SAH的影响 | 第47-49页 |
2.2.3 不同干预对大鼠脑组织内DNA总甲基化水平的影响 | 第49-50页 |
2.2.4 不同干预对脑梗死大鼠脑内DCX~+/5mC~+细胞数量的影响 | 第50-51页 |
2.2.5 不同干预对脑梗死大鼠脑内NeuN~+/5mC~+细胞数量的影响 | 第51-54页 |
2.3 讨论 | 第54-58页 |
2.3.1 Hcy对脑梗死大鼠脑组织DNMTs活性和DNA甲基化水平的影响 | 第54-55页 |
2.3.2 Hcy对脑梗死大鼠血浆SAM、SAH水平的影响 | 第55-56页 |
2.3.3 Hcy对增殖迁移神经干细胞 5mC水平的影响 | 第56-57页 |
2.3.4 Hcy对分化神经元 5mC水平的影响 | 第57-58页 |
2.4 小结 | 第58-59页 |
结论 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-69页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第69-71页 |
综述 脑缺血性中风后神经再生的研究进展 | 第71-84页 |
综述参考文献 | 第77-84页 |
致谢 | 第84-85页 |
个人简历 | 第85页 |